Ethylglucuronid hat sich in der forensischen Diagnostik aufgrund seiner hohen Spezifität für vorangegangenen Alkoholkonsum und seinem Nachweisfenster in Urin von bis zu fünf Tagen als Alkoholkonsummarker etabliert. Im ersten Teil dieser Arbeit wurden Proben von zwölf Leichen bei Obduktionen entnommen und mit LC-MS/MS auf EtG analysiert. Bei neun Leichen konnte EtG nachgewiesen werden, die entsprechenden Blutalkoholkonzentrationen betrugen 0,4 bis 3,7 ‰. In drei Fällen wurde kein EtG nachgewiesen, zwei von diesen hatten positive BAK von 1,0 ‰ bzw. 0,1 ‰, die vermutlich postmortal durch Bildung von Fäulnis-Alkohol zustande gekommen waren. Im Knochenmark aus postmortal entnommenen Rippen wurden EtG-Konzentrationen von 0,77 bis 9,36 µg/g gemessen. Damit waren EtG-Konzentrationen hier in allen Fällen niedriger als in der Galle (1,1 - 42,31 µg/mL), in acht von neun Fällen niedriger als im Blut (2,24 - 20,46 µg/mL) und vergleichbar oder höher als in Muskel-Proben. Die höchsten EtG-Konzentrationen wurden in acht Fällen im Urin gefunden (14,89 - 508,7 µg/mL). In einem Fall, in dem die Ethanolresorption noch nicht abgeschlossen war, besaß die Leber eine höhere EtG-Konzentration; im Lebergewebe wurden in allen anderen Fällen die zweithöchsten EtG-Konzentrationen (6,68 bis 76,73 µg/g) nach Urin gefunden. Im zweiten Teil der Arbeit wurde die Stabilität von EtG in postmortalen Proben sowie im Urin von gesunden Probanden untersucht. In den post-mortem-Proben (Leber, Muskulatur, Blut) wurde über vier Wochen Lagerung bei Raumtemperatur (RT, 20 - 27 °C) - weder nach Zugabe von 1 ‰ Ethanol noch ohne Ethanolzugabe - eine Neubildung von EtG beobachtet. Bei EtG-positiven Gewebeproben konnte nach vier Wochen Lagerung im Schnitt noch etwa ¾ des EtG zu t0 nachgewiesen werden. Im Urin kam es weder bei Kühlschrank-Lagerung (4 °C) noch bei RT über zwei Monate zu einer Neubildung von EtG. In den EtG-positiven Proben war die Substanz über die gesamte Versuchsdauer stabil. In der praktischen Anwendung kann die Bestimmung von EtG z.B. zu einer Abgrenzung von getrunkenem Alkohol zu Fäulnisalkohol dienen. Bei langen Leichenliegezeiten kann auch Knochenmark zum Nachweis von EtG eingesetzt werden. Die in Knochenmark gemessenen Konzentrationen waren geringer als in Urin, Leber oder Blut, aber mit LC-MS/MS noch gut detektierbar. EtG ist sowohl in Urin als auch in postmortalen Geweben und Blut auch bei RT länger als einen Monat nachweisbar. Ethyl glucuronide (EtG) has shown to be a reliable marker for alcohol consumption. In these studies postmortem tissue samples and body fluids have been analysed to assess EtG concentrations and the stability of EtG in urine samples has been examined. Postmortem EtG concentrations in rib bone marrow, liver, muscle, fat tissue, urine, blood and bile have been determined by LC–MS/MS. Samples have been taken from twelve corpses during autopsies. In nine corpses EtG could be detected, corresponding blood ethanol concentrations (BAC) were 0.04–0.37 g%. In three cases, no EtG has been found; two of these cases showed postmortem BACs – possibly due to putrefaction – of 0.01 and 0.1 g%. In rib bone marrow, which is easily accessible during autopsy, EtG concentrations (0.77–9.36 µg/g) have been lower than in blood (2.24–20.46 µg/mL) in eight of nine cases and comparable or higher than in muscle tissue. Therefore, rib bone marrow has been found suitable as matrix for EtG determination. The highest EtG concentrations have been found in urine in all but one case, where the resorption of ethanol had been incomplete. Second highest EtG concentrations have been detected in liver samples. In two cases with putrefaction, EtG could not be detected. In these cases, the detectable ethanol might have been produced partially or in total by postmortem fermentation. The stability of ethyl glucuronide under conditions of degradation has been examined in urine samples of nine volunteers and in postmortem tissue (liver, skeletal muscle) and blood taken from seven corpses at autopsies. Analysis has been performed by LC-MS/MS. EtG concentrations in urine samples ranged from 2.5 to 296.5 µg/mL. When stored at 4 °C in air tight test tubes EtG concentrations remained relatively constant; when stored at room temperature for 5 weeks in ventilated vials, variations of EtG concentrations ranged from a 30 % decrease to an 80 % increase, with an average of 37.5 % increase. Liver and skeletal muscle tissue of three corpses with positive blood alcohol concentrations (BAC, ranging from 0.106 to 0.183 g%) were stored for 4 weeks and analysed periodically. EtG concentrations decreased 27.7 % on average in 4 weeks storage at room temperature but EtG still was detectable in all samples with initial EtG concentrations higher than 1 µg/g. Blood and liver samples of four corpses with negative BACs were been stored at room temperature after addition of 0.1 g% of ethanol and no new formation of EtG has been observed.