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Nº 24, Vol. 12 (1), 2020. ISSN 2007 – 0705, pp.: 1 - 22
doi.org/10.21640/ns.v12i24.2081
1 Universidad Autónoma de Aguascalientes, Departamento de Química. E-mail: eperezmb@correo.uaa.mx
2 Universidad Autónoma de San Luis Potosí, Facultad de Ciencias Químicas
3 Universidad Autónoma de Aguascalientes, Departamento de Fisiología y Farmacología
© Universidad De La Salle Bajío (México)
Análisis in vitro de la acumulación de metales pesados en plantas de la familia
Asparagaceae tolerantes a la baja disponibilidad de agua
In vitro analysis of the accumulation of heavy metals in plants of the family
Asparagaceae tolerant to low water availability
Lucila Perales Aguilar1, Ma. del Socorro Santos Díaz2, Yenny Adriana Gómez Aguirre1,
Magdalena Samantha Ramos Gómez3 y Eugenio Pérez Molphe Balch1
Palabras clave: Agave; exclusión; fitoestabilización; metales pesados; propagación in vitro
Keywords: Agave; exclusion; heavy metals; in vitro propagation; phytostabilization
Recibido en: 15-07-2019 / Aceptado en: 04-11-2019
Resumen
Introducción: La familia Asparagaceae incluye varios géneros adaptados para sobrevivir a altas
temperaturas y con baja disponibilidad de agua. Entre éstos destacan Agave, Beaucarnea,
Dasylirion, Nolina y Yucca. México cuenta con una gran biodiversidad de estos grupos vegetales,
así como con una tradición ancestral en cuanto a su uso. Los sistemas de propagación in vitro son
eficientes para la producción de estas plantas, y además pueden ser usados para llevar a cabo
diversos tipos de estudios. Entre estos, están los estudios de tolerancia a metales pesados, los
cuales pueden servir para determinar qué especies son aptas para la reforestación y regeneración
de áreas contaminadas por actividades mineras.
Método: En este trabajo se propagaron in vitro 20 especies de la familia Asparagaceae, y se
evaluó su proceso de enraizamiento en medios de cultivo adicionados con Cd, Cu, Cr, Fe, Mn, Pb
y Zn. Se analizó el desarrollo de las raíces en presencia de estos metales y se determinó su
capacidad de absorberlos mediante espectrofotometría de absorción atómica de llama. Con estos
datos se calcularon los factores de translocación y bioacumulación con el fin de caracterizar la
respuesta de cada especie ante los metales pesados.
Resultados: El mayor número de brotes se presentó en las especies Beaucarnea recurvata con
5.7 y Nolina durangensis con 5.6 brotes por explante, respectivamente. El tratamiento con cromo
fue tóxico para la mayoría de las especies. Agave celsii, A. chiapensis, A. obscura, A. palmeri y
A. salmiana formaron raíz en todos los tratamientos con metales. De acuerdo a los factores de
translocación y bioacumulación las especies analizadas se clasificaron como fitoestabilizadoras,
exclusoras, bioacumuladoras e indicadoras. Las especies A. chiapensis, A. obscura y A. palmeri
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fueron bioacumuladoras para Mn. A. celsii y A. salmiana presentaron mecanismos de
fitoestabilización y exclusión.
Conclusión: La propagación in vitro permite generar grandes cantidades de plantas y además
estudiar sus respuestas ante la presencia de contaminantes. El género Agave mostró ser tolerante a
los metales, por lo que se puede usar para fitoestabilizar y remediar suelos contaminados.
Abstract
Introduction: The Asparagaceae family includes several genera adapted to survive at high
temperatures and with low water availability. These include Agave, Beaucarnea, Dasylirion,
Nolina and Yucca. Mexico has a great biodiversity in these plant groups, as well as an ancestral
tradition regarding its use. In vitro propagation systems are efficient for the production of these
plants and can be used to perform various types of studies. Among these are the studies of
tolerance to heavy metals, which can serve to determine which species are suitable for
reforestation and regeneration of areas contaminated by mining activities.
Method: In this work, 20 species of the family Asparagaceae were propagated in vitro and their
rooting process was evaluated in culture media added with Cd, Cu, Cr, Fe, Mn, Pb and Zn. The
development of roots in the presence of these metals was analyzed and its absorption capacity
was determined by flame atomic absorption spectrophotometry. With these data, translocation
and bioaccumulation factors were calculated in order to characterize the response of each species
to heavy metals.
Results: The highest number of shoots occurred in the species Beaucarnea recurvata, which
generated 5.7 shoots per explant and Nolina durangensis with 5.6. Chromium treatment was toxic
for most species. Agave celsii, A. chiapensis, A. obscura, A. palmeri and A. salmiana formed
roots in all treatments. According to translocation and bioaccumulation factors, the analyzed
species were classified as phytostabilizers, exclusors, bioaccumulators and indicators. The
species A. chiapensis, A. obscura and A. palmeri were bioaccumulators for Mn. A. celsii and A.
salmiana presented mechanisms of phytostabilization and exclusion.
Conclusion: In vitro propagation allows to work and study a wide range of species in the
presence of contaminants. The Agave genus is tolerant to metals and can be used to phytostabilize
and remediate contaminated soils.
Perales Aguilar et al.
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Introducción
Las zonas áridas, semiáridas y subhúmedas representan el 41% de la superficie del mundo, y
albergan el 20% de la diversidad vegetal (Bran y Gaitán, 2012). México no es la excepción en
este sentido, y este tipo de ecosistemas ocupan la mayor parte del territorio. Esto ha convertido a
nuestro país en uno de los mayores centros de distribución de especies vegetales adaptadas a estas
condiciones. La familia Asparagaceae agrupa a varios géneros de gran importancia, como Agave,
Beaucarnea, Dasylirion, Nolina y Yucca, mismos que incluyen una gran cantidad de especies
endémicas. Muchas de estas especies se encuentran bajo protección especial, amenazadas, o en
peligro de extinción, debido a la sobreexplotación y destrucción de su hábitat (Eguiarte et al.,
2013; Encina-Domínguez et al., 2013; Magallán-Hernández et al., 2014).
Por otro lado, estos grupos vegetales han sido aprovechados desde la época prehispánica
debido a sus innumerables usos. Son fuente de alimentos, bebidas, fibras y materias primas para
la elaboración de artesanías. Recientemente se les han encontrado usos no tradicionales, como la
producción de compuestos químicos de alto valor, edulcorantes y biocombustibles, lo que le
confiere más importancia a su conservación y uso racional (García et al., 2017). En este sentido,
la propagación in vitro es una herramienta útil para la conservación de especies de estos grupos.
Esta metodología consiste en la rápida multiplicación de plantas mediante el uso de medios de
cultivo artificiales adicionados con reguladores de crecimiento en un ambiente controlado
(fotoperiodo y temperatura), todo bajo condiciones axénicas.
La propagación in vitro permite también evaluar de una manera más sencilla y controlada
la capacidad de respuesta de las plantas ante diversos factores de estrés, por ejemplo la presencia
de metales pesados. Esto debido a que los mismos pueden ser incorporados al medio de cultivo
en cantidades precisas con el fin de analizar la respuesta de la planta ante los mismos (Di
Lonardo et al., 2011; Ashrafzadeh y Leung, 2015). De esta forma pueden estudiarse los diversos
mecanismos de tolerancia a los metales tales como sistemas antioxidantes, unión de moléculas
orgánicas con el metal, fitoestabilización, exclusión y acumulación (Srivastava, 2016; Sruthi et
al., 2017).
De acuerdo con el mecanismo de tolerancia que posean, las plantas pueden clasificarse en
las siguientes categorías: a) Bioacumuladoras. También conocidas como hiperacumuladoras.
Toman el metal a través de la raíz y lo translocan a la parte aérea en donde se acumula y alcanza
concentraciones mayores a las del suelo, esto sin mostrar síntomas de toxicidad. Estas plantas
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pueden ser usadas para la biorremediación ya que pueden remover los metales del suelo. b)
Fitoestabilizadoras. Estas plantas toman y acumulan el metal en la raíz, pero sin translocarlo a la
parte aérea. Este mecanismo también es útil para la biorremediación ya que fija los metales
pesados impidiendo su lixiviación y posterior llegada a los cuerpos de agua (Memon et al., 2001;
Lu et al., 2017). c) Exclusoras. No permiten la entrada de los metales a la raíz, esto a través de la
excreción de compuestos orgánicos que forman complejos con los metales en el suelo. d)
Indicadoras. Permiten el paso del metal a través de la raíz y su llegada a la parte aérea,
alcanzando concentraciones en sus tejidos similares a las presentes en el suelo. Suelen presentar
síntomas visibles que son proporcionales a la cantidad de metal presente en el suelo (Baker and
Brook 1989; Tosié et al., 2016).
Existe elevada vulnerabilidad en los ecosistemas de zonas áridas a las actividades
mineras, mismas que contaminan el suelo con metales pesados afectando su potencial ecológico y
biológico, llegando a la degradación y posteriormente a la pérdida del suelo (Alipur et al., 2016;
Hu et al., 2018). El Agave americana tiene mecanismos de exclusión para Cr debido a que se
acumula principalmente en las raíces por lo que tiene un enorme potencial de fitoestabilización
de Cr (Ramana et al., 2016). Los Agaves, y otros géneros relacionados, son elementos clave para
la estructura y funcionamiento de los ecosistemas de las zonas áridas y semiáridas, por lo que es
importante conocer su respuesta ante la presencia de metales pesados en el suelo. El contar con
plantas de zonas áridas y semiáridas tolerantes a metales permitiría utilizar estas especies para
procesos de rehabilitación de áreas contaminadas (Solanki y Dhankhar, 2011). El objetivo de este
estudio fue analizar la susceptibilidad de especies de la familia Asparagaceae tolerantes a la baja
disponibilidad de agua ante los metales pesados Cd, Cu, Cr, Fe, Mn, Pb y Zn en condiciones in
vitro.
Materiales y Métodos
Material vegetal
Se seleccionaron 20 especies de la familia Asparagaceae de talla mediana y grande, que pudieran
ser usadas en la restauración de ecosistemas contaminados por metales pesados. Los tejidos se
tomaron del Banco de Germoplasma in vitro de la Unidad de Biotecnología Vegetal de la
Universidad Autónoma de Aguascalientes (UAA), México. Las especies seleccionadas fueron:
Agave bracteosa S. Watson ex Engelm, A. celsii Hook., A. chiapensis Jacobi, A. difformis A.
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Berger, A. funkiana K. Koch C. D. Bouché, A. obscura Schiede ex Schltdl., A. palmeri
Engelm, A. peacockii Croucher, A. potatorum Zucc., A. victoria-reginae T. Moore, A. salmiana
Otto ex Salm-Dyck, A. titanota Gentry, Beaucarnea goldmanii Rose, B. recurvata Lem.,
Dasylirion acrotriche (Shiede) Zucc., D. glaucophyllum Hook., Nolina durangensis Trel.,Yucca
carnerosana (Trel.) Mckelvey, Y. filamentosa L. y Y. filifera Chabaud.
Propagación in vitro del material vegetal
Se usaron plántulas generadas in vitro, de las cuales se eliminó la parte apical de las hojas para
obtener un explante basal. Se colocaron cuatro explantes en frascos de 250 mL, conteniendo 50
mL de medio Murashige y Skoog, (MS) (1962), pH de 5.7 con 3% (w/v) de sacarosa y 8 g L-1 de
agar como gelificante. Se adicionaron 2 mg L-1 de benciladenina (BA) para los géneros Agave y
Yucca, para el resto de las especies se usó el mismo medio pero adicionados con 2.5 mg L-1 de
BA. Los cultivos se mantuvieron a 25 2 °C, con fotoperiodo de 18/6. A los tres meses se
cuantificó el número de brotes generados y su longitud, con una n=16 (explantes). Los brotes
generados se utilizaron en las fases posteriores del estudio.
Enraizamiento de brotes in vitro y análisis de la susceptibilidad a los metales pesados
Los brotes obtenidos en la etapa de propagación se transfirieron a medio MS sin metales (control)
o en medio MS conteniendo metales pesados para su enraizamiento. Las concentraciones de
metales seleccionados fueron a) 0.005 mM de CdCl2; b) 0.2 mM de CuSO4·5H20; c) 1 mM de
KCr2O7; d) 1 mM de FeSO4·7H2O; e) 0.4 mM de Pb(NO3)2; f) 1.6 mM de MnSO4·H2O y g) 0.48
mM de ZnSO4·7H2O, todas las sales presentaban 99% de pureza, de grado de reactivo y marca
SIGMA. Las concentraciones de metales a probar se seleccionaron de acuerdo a lo reportado en
la literatura (Gatti, 2008; Ayari et al., 2010; Perveen y Anis, 2012; Wiszniewska et al., 2017). Se
incluyeron tres brotes por tratamiento con tres réplicas. Los brotes se mantuvieron a 25 2 °C,
con fotoperiodo de 18/6. Después de dos meses de iniciado el experimento se registraron los
datos de supervivencia y enraizamiento de los brotes. Posteriormente, las plántulas que
sobrevivieron y generaron raíz se sacaron del recipiente de cultivo y las raíces se lavaron
cuidadosamente para eliminar restos de medio. Las plántulas fueron fotografiadas con una
cámara SONY de 20.1 megapixeles y las fotografías fueron analizadas con el procesador de
imágenes Imagen Java 1.46 , que determina la posición de puntos específicos por lo que se puede
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calcular el área de las raíces desarrolladas para conocer el efecto de los metales. Los datos antes
descritos se analizaron con un ANOVA, n=9 y prueba de Dunnet (P≤0.05) usando el paquete
estadístico GraphPad Prism 7.09.
Cuantificación de metales pesados
Se seleccionaron sólo las especies que desarrollaron raíz en todos los tratamientos con metales
pesados. Las plantas generadas in vitro se dividieron en parte aérea y raíz, que se liofilizaron
(liofilizador Freezone® 4.5 Labconco). Las muestras se homogenizaron con el equipo
TissueLyser II QIA GEN® y se digirieron por 24 horas con ácido nítrico (HNO3) aforando a un
volumen de 30 mL. La cuantificación de metales pesados se realizó por absorción atómica
(espectrofotómetro PerkinElmer, Atomic Absorption Spectrometer, PineAACLE900H). Para
evaluar la exactitud de la medición se incluyó un blanco (mezcla sin muestra); un estándar (metal
conocido); un fortificado (metal conocido + muestra); no fortificado (muestra); duplicado uno
(muestra); y duplicado dos (muestra), con una n=3. El factor de translocación (TF) se calculó
dividiendo la concentración del metal de la parte aérea entre la concentración del metal de la raíz
y el factor de bioacumulación (BAC) se calculó dividiendo la concentración del metal en el tejido
(parte aérea) entre la concentración del metal en el medio de cultivo (Chang-Kee et al., 2018).
Resultados
Propagación in vitro del material vegetal
Todas las especies generaron brotes de 2 a 8 cm de longitud después de los 3 meses de cultivo. B.
recurvata fue la especie que generó el mayor número de brotes con 5.7 brotes en promedio por
explante, seguido por N. durangensis con 5.6 brotes, D. glaucophyllum y Agave obscura con 4.4
brotes (Fig. 1). Las especies que generaron el menor número de brotes fueron A. palmeri, A.
peacockii y A. difformis con 2 brotes por explante. En la Fig. 1 se muestra el aspecto los brotes
generados.
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Fig. 1. Generación de brotes in vitro en seis de las especies incluidas en el estudio.
a) Agave celsii; b) A. obscura; c) Beaucarnea recurvata; d) Dasylirion glaucophyllum; e) Nolina
durangensis; f) Yucca filifera.
Fig. 1. In vitro generation of shoots in six of the species included in the study.
a) Agave celsii; b) A. obscura; c) Beaucarnea recurvata; d) Dasylirion glaucophyllum; e) Nolina
durangensis; f) Yucca filifera.
Enraizamiento de brotes in vitro y análisis de la susceptibilidad a los metales pesados
La supervivencia de las especies evaluadas durante el enraizamiento es un indicador directo de su
sensibilidad ante el tóxico (susceptibilidad). La supervivencia de las especies estudiadas fue alta,
oscilando entre 80 y 95%. La supervivencia fue mayor en el medio con Mn, y disminuyó en el
siguiente orden: Cu Zn Cd Fe Pb Cr. El tratamiento con cromo generó los porcentajes más
bajos de supervivencia de las especies analizadas (Cuadro 1).
a
b
c
d
e
f
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Cuadro 1. Supervivencia de las especies evaluadas expuestas a metales pesados en la etapa
de enraizamiento.
Table 1. Survival of the evaluated species exposed to heavy metals in the rooting stage.
Familia
Asparagaceae
Control
(%)
Cd
(%)
Cu
(%)
Cr
(%)
Fe
(%)
Mn
(%)
Pb
(%)
Zn
(%)
1. A. bracteosa
93.3 0.6
96.7 2.1
93 5.2
78.3 16.1
96 5.2
60 24*
79 13.5
77.7 13.7
2. A. celsii
100 0
97.7 2.3
99.3 0.6
60.3 35.4*
97.7 1.5
96.3 5.5
97.7 1.5
97.7 1.5
3. A. chiapensis
99.3 0.6
98.3 0.6
90.7 1.2
66.3 3.5*
98 1.7
95 1.7
96.7 2
97 1.7
4. A. difformis
100 0
97.3 1.5
93.3 5.8
70 10*
97.3 2.1
96 3
99.3 0..6
96.9 1.6
5. A. funkiana
99 0
97 1.7
94 1.7
36.3 15*
92 3.5
98.3 1.2
89.7 3.5
97.7 0.6
6. A. obscura
100 0
98.3 0.6
96 5.3
85 6.2
90.7 1.2
98.7 1.3
88 19
97 1.7
7. A. palmeri
100 0
97.3 1.2
96.3 5.5
82.7 4.6*
98.7 0.6
97 2
82.7 4.6*
93 5.2
8. A. peacockii
100 0
97.7 1.5
99.3 0.6
73 3*
98.3 0.6
98.7 0.6
94.7 4.5
97 1.7
9. A. potatorum
98.3 2.1
98.3 0.6
92 10.6
50 5*
97.7 1.5
99 1
99.3 0.6
93.7 9.2
10. A. victoria-reginae
100 0
96 1.7
97.7 1.5
65 8.5*
98.3 1.2
99.3 0.6
98.7 0.6
97.7 1.5
11. A. salmiana
100 0
99.7 0.6
96.3 5.5
89 9.5*
97 2
99.3 0.6
98 1
97.3 1.2
12. A. titanota
100 0
96.3 1.5
82.7 4.6*
62.7 3.1*
97.7 2.3
98 1.7
97.7 1.2
95 4.6
13. B. goldmanii
99.3 0.6
58.7 12.5*
88.7 2.3
31.7 15.3*
66.3 29.7
97 1.7
78.3 20.2
95 1.7
14. B. recurvata
99.3 0.6
60.7 17.5*
90.7 1.2
34.3 24.9*
38.7 13*
83.3 5.8
71.7 7.6
88.3 4
15. D. acrotriche
98 1.7
71.7 9.8
72 7.2
17.7 6.8*
76.3 20.3
98 1.7
43.3 26.3*
97 1.7
16. D. glaucophyllum
99.7 0.6
78 36.4
79.3 3.1
5 5*
41 21.5*
93 3
66.3 16.5
96 3
17. N. durangensis
98 1.7
47 21.7*
95.7 3.1
16.7 12.6*
30.3 8.4*
90.7 5
36.3 12.3*
66 18.7
18. Y. carnerosana
95.7 3.5
82 13.9
76.7 17.9
16.7 7.7*
91 1.7
89.7 3.5
88.7 2.3
55 19.5*
19.Y. filamentosa
94 1.7
84 10.4
76.7 3.1
35 5*
63.3 15.3
88 7.2
42 13.1*
78.3 3
20. Y. filifera
97 3.4
95 1.7
60 14.6
17.3 6.8*
91 1.7
89.7 1.5
27.3 15*
44.7 12.3*
Media Desviación estándar n=9. Prueba Dunnet (P ≤ 0.05). * Indica diferencia significativa.
Mean Standard deviation n = 9. Dunnet test (P ≤ 0.05). * Indicates significant difference.
En cuanto al efecto de los metales en el desarrollo del sistema radical, esto medido como área del
mismo, se tuvieron estos resultados. Las siguientes especies presentaron mayor área radicular en
los tratamientos con metales: en Cu A. bracteosa y A. difformis; en Fe A. bracteosa, A.
chiapensis, A. difformis y N. durangensis; en Mn A. obscura, A. palmeri, D. glaucophyllum y N.
durangensis; y en Zn A. bracteosa, A. difformis, A. palmeri, D. glaucophyllum y N. durangensis.
Las especies que no desarrollaron raíz fueron en Cu A. funkiana, A. potatorum, A. victoria-
reginae y B. recurvata; en Fe A. peacockii, B. recurvata, D. glaucophyllum, Y. carnerosana y Y.
filamentosa; en Mn, B. recurvata, D. acrotriche y Y. carnerosana y en Zn B. recurvata (Fig. 2).
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Fig. 2. Efecto de los metales en el desarrollo de las raíces de las especies analizadas en los
tratamientos con a) Cu+2; b) Fe+2; c) Mn+2; d) Zn+2.
Fig. 2. Effect of metals on root development, measured as an area covered by the radical
system, of the species analyzed in the treatments with a) Cu+2; b) Fe+2; c) Mn+2; d) Zn+2.
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Las especies que presentaron mayor área radicular en el tratamiento con Cd fueron: A. difformis y
en Pb A. difformis y N. durangensis. En el tratamiento con cromo solo cinco especies formaron
raíz: A. celsii, A. chiapensis, A. obscura, A. palmeri y A. salmiana. Las especies que no formaron
raíz en Cd fueron: A. bracteosa, A. titanota y Y. filamentosa y en el tratamiento con plomo B.
recurvata y Y. carnerosana (Fig. 3).
Fig. 3. Efecto de los metales en el desarrollo de las raíces de las especies analizadas en los
tratamientos con a) Cd+2; b) Cr+2; c) Pb+2.
Fig, 3. Effect of metals on root development, measured as an area covered by the radical
system, of the species analyzed in the treatments with a) Cd+2; b) Cr+2; c) Pb+2.
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La especie A. palmeri presentó menor biomasa de la parte aérea en el tratamiento con cromo; se
observa una raíz más gruesa y menos abundante en comparación con el control. En el tratamiento
con plomo se observa una menor longitud de las raíces en comparación con el resto de las
especies (Fig. 4).
Fig. 4. Desarrollo de raíces en la especie Agave palmeri en los tratamientos. a) Control; b)
Cd 0.005 mM; c) Cu 0.2 mM; d) Cr 1 mM; e) Fe 1 mM; f) Mn 1.6 mM; g) Pb 0.4 mM; h)
Zn 0.48 mM. Escala 1 cm.
Fig. 4. Root development in Agave palmeri in treatments. a) Control; b) Cd 0.005 mM; c)
Cu 0.2 mM; d) Cr 1 mM; e) Fe 1 mM; f) Mn 1.6 mM; g) Pb 0.4 mM; h) Zn 0.48 mM. 1 cm
scale.
Cuantificación de metales pesados
Para estos experimentos se eligieron las especies que sobrevivieron y formaron raíz en todos los
tratamientos, que fueron A. celsii, A. chiapensis, A. obscura, A. palmeri y A. salmiana. En las
a
b
c
d
e
f
g
h
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plantas control no se detectaron los metales. Las especies expuestas a Cu, Cr, Fe, Pb y Zn
acumularon el metal principalmente en raíz (Figs. 5 y 6), en tanto que el Mn se acumuló
mayormente en la parte aérea de A. celsii, A. obscura y A. salmiana.
Fig. 5. Concentración media ( SD) de: a) Cu+2; b) Fe+2; c) Mn+2; d) Zn+2 en parte aérea y
raíz.
Fig. 5. Average concentration ( SD) of: a) Cu + 2; b) Fe + 2; c) Mn + 2; d) Zn + 2 in aerial part
and root.
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En el caso del Cd, algunas especies como A. celsii y A. obscura acumularon el metal tanto en raíz
como en la parte aérea. A. chiapensis acumuló más metal en las hojas y A. obscura más en las
raíces. La especie A. palmeri acumuló Cd, Cr y Pb en las raíces por lo que podría tener un uso
potencial en restauración de sitios contaminados por estos metales.
Fig. 6. Concentración media ( SD) de: a) Cd+2; b) Cr+2; c) Pb+2 en parte aérea y raíz.
Fig. 6. Average concentration ( SD) of: a) Cd + 2; b) Cr + 2; c) Pb + 2 in aerial part and root.
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Para determinar la eficiencia de acumulación se calcularon los valores de TF y BAC. Los valores
de TF fueron muy bajos para las cinco especies en el tratamiento con cobre y fierro. Por otro
lado, los BAC fueron mayores oscilando entre 2.17 y 11.7, las especies evaluadas con estos
metales correspondieron a fitoestabilizadoras. Para el metal manganeso A. chiapensis, A. osbcura
y A. palmeri presentaron valores de TF mayores a 1 se clasificaron como hiperacumuladoras y A.
celsii como indicadora. En zinc, A. osbcura se clasificó como hiperacumuladora y el resto como
fitoestabilizadoras (Cuadro 2).
Cuadro 2. Media del Factor de Translocación (TF) y Factor de Bioacumulación (BAC) para
Cu, Fe, Mn y Zn, en cinco especies clasificadas como: Fitoestabilizadora (F);
Hiperacumuladora (H); o Indicadora(I).
Table 2. Mean Translocation Factor (TF) and Bioaccumulation Factor (BAC) for Cu, Fe,
Mn and Zn, in five species classified as: Phytostabilizer (F); Bioaccumulator (B); or
indicator (I).
Especie /
Metal
Cu
Fe
Mn
Zn
TF
BAC
C
TF
BAC
C
TF
BAC
C
TF
BAC
C
A. celsii
0.04
3.31
F
0.45
3.47
F
0.97
38.78
I
0.51
70.52
F
A. chiapensis
0.02
1.55
F
0.07
1.35
F
2.53
34.81
H
0.62
66.44
F
A. obscura
0.27
11.73
F
0.21
8.22
F
1.11
31.55
H
1.06
53.57
H
A. palmeri
0.05
8.97
F
0.19
5.54
F
1.47
20.13
H
0.82
36.66
F
A. salmiana
0.08
5.13
F
0.25
2.17
F
0.80
31.60
F
0.44
40.03
F
En Cd la especie A. chiapensis fue hiperacumuladora, A. palmeri exclusora y A. celsii, A. osbcura
y A. salmiana fitoestabilizadoras. En cromo, A. chiapensis y A. palmeri exclusoras. En plomo los
valores de TF y BAC fueron muy bajos, las cincos especies se clasificaron como exclusoras
(Cuadro 3).
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Cuadro 3. Media del Factor de Translocación (TF) y Factor de Bioacumulación (BAC) para
Cd, Cr y Pb, en cinco especies clasificadas como: Fitoestabilizadora (F); Hiperacumuladora
(H); o Exclusora (E).
Table 3. Mean of Translocation Factor (TF) and Bioaccumulation Factor (BAC) for Cd, Cr
and Pb, in five species classified as: Phytostabilizer (F); Bioaccumulator (B); or Exclusor
(E).
Especie / Metal
Cd
Cr
Pb
TF
BAC
C
TF
BAC
C
TF
BAC
C
A. celsii
0.75
55.3
F
0.27
4.04
F
0.01
0.19
E
A. chiapensis
2.15
49.86
H
0.02
0.42
E
0
0
E
A. obscura
0.89
82.78
F
0.18
2.55
F
0.10
0.44
E
A. palmeri
0
0
E
0
0
E
0
0
E
A. salmiana
0.11
8
F
0.38
6.40
F
0
0
E
Las especies hiperacumuladoras en Mn, Zn y Cd se pueden usar para remediar zonas
contaminadas. Las especies A. celsii, A. obscura, A. palmeri y A. salmiana clasificadas como
fitoestabilizadoras y exclusoras se pueden usar para la restauración. Las especies evaluadas se
pueden usar para diferentes fines, debido a su capacidad de absorber metales en diferentes
niveles.
Discusión
Los sistemas de propagación in vitro han mostrado su eficiencia en varias especies de la familia
Asparagaceae. En este trabajo, se utilizaron protocolos previamente desarrollados para especies
de Agave (Domínguez et al., 2008), Yucca (López-Ramírez et al., 2018) y Beaucarnea,
Dasylirion y Nolina (Reyes-Silva et al., 2013). Los resultados obtenidos en cuanto a la eficiencia
de estos sistemas fueron similares a lo reportado en los trabajos mencionados. Se partió de tejidos
ya establecidos in vitro y conservados en un banco de germoplasma, por lo que no fue necesaria
la colecta de material vegetal en campo ni el establecimiento in vitro del mismo.
Los metales analizados en este estudio pueden ser divididos en dos categorías. Cu, Fe, Mn
y Zn que son considerados micronutrientes, ya que tienen un papel en la bioquímica de la planta.
Ésta cuenta con mecanismos para tomarlos del suelo y sólo son tóxicos cuando se encuentran en
concentraciones muy elevadas. Estos metales forman parte del medio de cultivo usado en este
trabajo. Por otro lado, Cd, Cr y Pb no son micronutrientes y no son necesarios para la planta. Su
presencia en el suelo suele ser tóxica, aun en bajas concentraciones. En este estudio el metal que
resultó más tóxico para las especies analizadas fue el Cr. Este metal disminuye la actividad
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enzimática, produce daños a nivel membrana, clorosis, y daño a nivel de la raíz (Beltrán y
Gómez, 2015). Los metales en tejidos vegetales ocasionan trastornos histológicos, inhiben el
crecimiento y afectan la fotosíntesis, incluso en concentraciones subletales (Ouyang et al., 2012;
Peláez et al., 2014). La raíz es el órgano principal que retiene metales pesados debido a la
adsorción y a la quelación mediante fitoquelatinas y compartimientos vacuolares (Du et al.,
2018). El Cr entra en las raíces por reducción y complejación con exudados de la raíz que
mejoran la solubilidad y la movilidad a través del xilema, su acumulación es principalmente en
raíces y muy baja en brotes (Singh et al., 2016). Las plantas inmovilizan los metales en las raíces
lo que reduce la biodisponibilidad del metal a entrar en la cadena alimenticia. D. maritima L., es
una especie que pertenece a la familia Asparagaceae y tiene uso potencial en fitoextracción de
Cd, Cu, Cr y Zn (Fait et al., 2018). Existen plantas que son tolerantes y se pueden desarrollar ante
la presencia de Cr. Ramana et al. (2016) estudiaron A. americana ante la presencia de Cr en suelo
y concluyeron que él metal se acumuló principalmente en las raíces, lo que demuestra su
potencial de fitoestabilizar al contaminante. La especie Paspalum conjugatum acumuló
uniformemente al cromo en todas sus partes (raíz, tallo, hojas, flores), Echinochloa colona,
Cyperus odoratus y Digitaria sanguinalis fueron acumuladoras de Cd, Cu, Cr y Zn (Mendieta y
Taisigüe, 2014).
La concentración de los metales en la parte aérea y raíz fue significativamente diferente
entre las especies evaluadas. La habilidad de translocar el metal desde las raíces a la parte aérea
se evalúa por el TF. El BAC se define como la relación del contenido del metal en la parte aérea
y medio de cultivo con el metal. Valores muy bajos de TF y BAC quieren decir que el
mecanismo de la planta es de exclusión (Fu et al., 2019). Las plantas que son resistentes a la
sequía pueden tolerar contaminantes como los metales pesados, dependiendo del grado y de la
absorción del metal en parte aérea o raíz, las plantas se pueden clasificar en hiperacumuladoras,
fitoestabilizaoras, exclusoras o indicadoras, es importante identificar especies que estabilicen los
metales pesados en la raíz, evitando así, su exposición a la cadena alimenticia, en este caso serían
las fitoestabilizadoras (Nirola et al., 2016). Cuando las plantas tienen mecanismos que controlan
la translocación del metal desde la raíz hasta la parte aérea acumulándolo a una concentración
similar a la expuesta, se considera indicadora (Srivastava et al., 2016). Generalmente metales
como Cd, Cr y Pb se acumulan fundamentalmente en raíces y metales como Cu, Fe, Mn y Zn en
la parte aérea de las plantas (Fernández et al., 2018). El cadmio fue estudiado en Agave
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lechuguilla y los resultados arrojaron que reduce las células del parénquima, causa estrés
oxidativo, interfiere en la vascularización, daños funcionales, senescencia celular y clorosis. El
Cd ingresa a las plantas a través de una vía simplástica y llega al xilema (Méndez-Hurtado et al.,
2013).
El cultivo in vitro es una herramienta fundamental para entender las relaciones planta-
contaminante ya que puede predecir la respuesta de las plantas al medioambiente y también sirve
para desarrollar protocolos para plantas con elevada capacidad de fitorremediación (Couselo et
al., 2010; Morales-Rubio et al., 2016). El conocimiento y análisis de las plantas ante la presencia
de metales pesados sirve para elegir aquellas plantas que acumulan el metal en la parte de la raíz
y que tengan alta biomasa para tener mayor impacto en la restauración de suelos contaminados.
Existen diferentes tipos de modelos de restauración, dependiendo del agente, el tipo y el nivel de
degradación (Navarro et al., 2017).
Los sistemas de propagación in vitro son eficientes para conocer la respuesta de las
especies vegetales ante los factores ambientales adversos, debido a que es más fácil realizar y
controlar las pruebas de los bioensayos in vitro, a través de esta herramienta fue posible conocer
la respuesta de las plantas ante los metales. Las especies A. celsii, A. chiapensis, A. obscura, A.
palmeri y A. salmiana se desarrollaron en presencia de Cd, Cu, Cr, Fe, Mn, Pb y Zn; estas
especies tolerantes a los metales, pertenecen al género Agave, debido a esta característica se
recomienda su uso para la restauración de áreas contaminadas con metales pesados y con poca
disponibilidad de agua. Las plantas poseen diversos mecanismos celulares, lo cual permite
aumentar la tolerancia ante los metales pesados. Identificar la capacidad de las plantas para
transferir metales servirá para elaborar guías de fitoremediación y restauración.
Agradecimientos
Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) por la beca otorgada a LPA. Al
Fondo Mixto CONACYT-Gobierno del Estado de Aguascalientes por el apoyo financiero
otorgado para la realización del proyecto (FOMIX AGS-2015-02-01-267656). A Martha E.
Pérez, Isaac Reyes, Laura Yamamoto F. y D. Paloma Martínez B. por el apoyo técnico brindado.
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