ArticlePDF Available

Molecular genetics features of the epidemic season 2017-2018 on the influenza in Kazakhstan (IN RUSSIAN)

Authors:

Abstract

Influenza viruses are a constant global public health problem. Virological surveillance of influenza is an important tool for the early detection of new genetic variants of viruses of epidemiological and clinical significance. The purpose of this study is to determine the molecular genetic characteristics of influenza viruses circulating in Kazakhstan during the 2017-2018 epidemiological season. gene sequences of twelve strains of influenza A virus (subtype H1N1pdm09-9, subtype H3N2-3) and ten strains of influenza B virus (genotype B / Victoria-2, genotype B / Yamagata-8) were studied in non-licensing sites of the republic. According to phylogenetic analysis, all the sequenced influenza A / H1N1pdm09 strains belonged to clade 6B.1. Influenza A / H3N2 viruses were distinguished by significant genetic diversity – the studied viruses belonged to several phylogenetic groups and subgroups, with a predominance of viruses similar to the vaccine strain. It was found that the majority of the detected influenza B viruses in Kazakhstan belonged to the B / Yamagata lineage and belonged to clade 3. The results of this study confirm the importance of continuous monitoring of mutational variability and phylogenetic analysis of circulating strains in the selection of vaccine strains for specific prevention of influenza and antiviral drugs.
© 2019 Al-Farabi Kazakh National University
МРНТИ 34.23; 34.15; 34.25.21
Сагымбай А.Б.1, Нусупбаева Г.Е.2, Тлеумбетова Н.Ж.3,
Муталиева А.С.4, Нурпейсова А.С.5, Джусупова Д.Б.6,
Дигель И.7
1студент PhD-докторантуры, e-mail: altinai_S@mail.ru
2заведующая Референс лабораторией, e-mail: gnusupbaeva@mail.ru
3врач-вирусолог, e-mail: nn_nazym@mail.ru
4врач-вирусолог, e-mail: aknur.kz@mail.ru
5студент PhD-докторантуры, e-mail: nurai1005@mail.ru
6доктор биологических наук, профессор, e-mail: dariya_2507@mail.ru
7PhD, e-mail: digel@fh-aahen.de
1,5,6 Казахский национальный педагогический университет имени Абая, Казахстан, г. Алматы
2,3,4 Референс лаборатория по контролю за вирусными инфекциями
Филиала «Научно-практический центр санитарно-эпидемиологической экспертизы и
мониторинга» НЦОЗ МЗ РК, Казахстан, г. Алматы
7Институт прикладных исследований, Германия, г. Аахен
МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ
ОСОБЕННОСТИ ЭПИДЕМИЧЕСКОГО СЕЗОНА
2017-2018 ГГ. ПО ГРИППУ В КАЗАХСТАНЕ
Вирусы гриппа представляют собой постоянную проблему глобального общественного
здравоохранения. Вирусологическое наблюдение за гриппом является важным инструментом для
раннего выявления новых генетических вариантов вирусов эпидемиологического и клиническое
значения.
Целью данного исследования является определение молекулярно-генетических характеристик
вирусов гриппа, циркулировавших на территории Казахстана в течение эпидемиологического
сезона 2017-2018 гг. Были изучены последовательности генов двенадцати штаммов вируса
гриппа А (подтип H1N1pdm09 – 9, подтип H3N2 – 3) и десяти штаммов вируса гриппа В (генотип
В/Victoria – 2, генотип B/Yamagata – 8), выделенных в недозорных сайтах республики. По данным
филогенетического анализа, все секвенированные штаммы вируса гриппа А/Н1N1pdm09
принадлежали к клайду 6В.1. Вирусы гриппа A/H3N2 отличились значительным генетическим
разнообразием – исследованные вирусы принадлежали к нескольким филогенетическим группам
и подгруппам с преобладанием вирусов, подобные вакцинному штамму. Установлено, что
преобладающая часть выявленных вирусов гриппа В на территории Казахстана, принадлежала
к линии B/Yamagata и относилась к клайду 3. Результаты этого исследования подтверждают
важность непрерывного мониторинга мутационной изменчивости и филогенетического анализа
циркулирующих штаммов в выборе вакцинных штаммов для специфической профилактики
гриппа и противовирусных препаратов.
Ключевые слова: вирус гриппа, молекулярно-генетический анализ, филогенетический
анализ, вакцинные штаммы.
51
ISSN 1563-034Х Eurasian Journal of Ecology. №1 (58). 2019
еISSN 2617-7358
Сагымбай А.Б. и др.
Sagymbay A.B.1, Nusupbaeva G.E.2, Tleumbetova N.Zh.3, Mutalieva A.S.4,
Nurpeisova A.S.5, Jussupova D.B. 6, Digel I.7
1PhD-student, e-mail: altinai_S@mail.ru
2Head of reference laboratory, e-mail: gnusupbaeva@mail.ru
3Doctor-virologist, e-mail: nn_nazym@mail.ru
4Doctor-virologist, e-mail: aknur.kz@mail.ru
5PhD-student, e-mail: nurai1005@mail.ru
6Doctor of Biological Sciences, professor, e-mail: dariya_2507@mail.ru
7PhD, e-mail: digel@fh-aahen.de
1,5,6Abai Kazakh National Pedagogical University, Kazakhstan, Almaty
2,3,4 Reference laboratory for the control of viral infections of the Branch “Scientific and
Practical Center for Sanitary-Epidemiological Examination and Monitoring” NCPH of Ministry
of Health of Kazakhstan, Kazakhstan, Almaty
7Institute for Applied Research, Germany, Aachen
Molecular genetics features of the epidemic season 2017-2018
on the influenza in Kazakhstan
Influenza viruses are a constant global public health problem. Virological surveillance of influenza
is an important tool for the early detection of new genetic variants of viruses of epidemiological and
clinical significance.
The purpose of this study is to determine the molecular genetic characteristics of influenza virus-
es circulating in Kazakhstan during the 2017-2018 epidemiological season. gene sequences of twelve
strains of influenza A virus (subtype H1N1pdm09-9, subtype H3N2-3) and ten strains of influenza B
virus (genotype B / Victoria-2, genotype B / Yamagata-8) were studied in non-licensing sites of the repub-
lic. According to phylogenetic analysis, all the sequenced influenza A / H1N1pdm09 strains belonged to
clade 6B.1. Influenza A / H3N2 viruses were distinguished by significant genetic diversity – the studied
viruses belonged to several phylogenetic groups and subgroups, with a predominance of viruses similar
to the vaccine strain. It was found that the majority of the detected influenza B viruses in Kazakhstan
belonged to the B / Yamagata lineage and belonged to clade 3. The results of this study confirm the
importance of continuous monitoring of mutational variability and phylogenetic analysis of circulating
strains in the selection of vaccine strains for specific prevention of influenza and antiviral drugs.
Key words: influenza virus, molecular genetic analysis, phylogenetic analysis, vaccine strains.
Сағымбай А.Б.1, Нусупбаева Г.Е.2, Тлеумбетова Н.Ж.3, Мүтәлиева А.С.4,
Нурпейсова А.С.5, Джусупова Д.Б.6, Дигель И.7
1PhD-докторантура студенті, e-mail: altinai_S@mail.ru
2Референс лаборатория меңгерушісі, e-mail: gnusupbaeva@mail.ru
3вирусолог-дәрігер, e-mail: nn_nazym@mail.ru
4вирусолог-дәрігер, e-mail: aknur.kz@mail.ru
5PhD-докторантура студенті, e-mail: nurai1005@mail.ru
6биология ғылымдарының докторы, профессор, e-mail: dariya_2507@mail.ru
7PhD, e-mail: digel@fh-aahen.de
1,5,6Абай атындағы Казақ ұлттық педагогикалық университеті, Қазақстан, Алматы қ.
2,3,4 Вирусты жұқпаларды қадағалайтын референс зертхана ҚР ДСМ ҚДСҰОШЖҚ РМК
«Санитарлық-эпидемиологиялық сараптама және мониторинг
ғылыми-практикалық орталығы» филиалы, Алматы қ., Қазақстан
7Қолданбалы зерттеулер институты, Аахен қ., Германия
Қазақстандағы 2017-2018 жж. тұмау эпидемиялық
маусымының молекулалы-генетикалық ерекшеліктері
Тұмау вирусы жаһандық қоғамдық денсаулық сақтаудың тұрақты өзекті мәселесі болып
табылады. Тұмауды вирусологиялық қадағалау эпидемиологиялық және клиникалық маңызды
вирустың жаңа генетикалық нұсқаларын ерте анықтаудың маңызды құралы болып табылады.
Аталмыш зерттеудің мақсаты – 2017-2018 жылдары эпидемиологиялық маусымы
барысында Қазақстан аумағы айналымындағы тұмау вирусының молекулярлы-генетикалық
сипаттамаларын анықтау. Осылайша, тұмаудың A вирусының он екі штаммдарының (H1N1p-
dm09 субтипі-9, H3N2 субтипі-3) және B тұмауының 10 штаммының (B/ Виктория генатипі-2, B/
Yamagata генотипі-8) ген тізбектерінің зерттеуі жүргізілді. Филогенетикалық талдау мәліметтері
бойынша, A/H1N1pdm09 штаммдарының барлығы 6B.1 клайдына сәйкес екені анықталды. А/
H3N2 тұмау вирустары маңызды генетикалық әртүрлілігімен ерекшеленді – зерттелген вирустар
бірнеше филогенетикалық топтар мен кіші топшаларға бөлінді, бірақ вирустардың басым бөлігі
вакциналық штаммға ұқсас болды. Сондай-ақ, елде анықталған B тұмауының басым көпшілігі
Вестник. Серия экологическая. №1 (58). 2019
52
Молекулярно-генетические особенности эпидемического сезона 2017-2018 гг. по гриппу в Казахстане
B/Yamagata желісіне және 3-ші клайдына тиесілі екендігі анықталды. Зерттеу нәтижелері
тұмауға қарсы препараттарды дайындау үшін және вирусты арнайы алдын алу үшін арналған
вакцина штамдарын таңдау кезінде, айналмалы штаммдардың мутациялық өзгергіштігін және
филогенетикалық талдауын үздіксіз бақылаудың маңыздылығын растайды.
Түйін сөздер: тұмау вирусы, молекулярлық-генетикалық талдау, филогенетикалық талдау,
вакцина штамдары.
Введение
Из всех вирусных респираторных инфекций
у людей грипп имеет наибольшее клиническое и
эпидемиологическое значение. Каждый год 600
миллионов случаев гриппа происходят во всем
мире, причем у 290 000-650 000 человек грипп
приводит к смерти [1] (WHO, 2018a). Ежегодно
на территории Республики Казахстан также ре-
гистрируются от 600 тысяч до 1,2 млн. случаев
ОРВИ и гриппа [2].
Как уже отмечалось, вирусы гриппа А и В
практически ежегодно вызывают эпидемиче-
ские подъемы заболевания, а для вирусов гриппа
А известны пандемические формы распростра-
нения. Последняя пандемия гриппа произошла в
2009-2010 году, которая была связана с вирусом
гриппа A/H1N1pdm09, содержащим сложную
комбинацию сегментов генов от свиней, вирусов
птичьего и человеческого гриппов [3-5]. Эти ви-
русы полностью заменили бывшие сезонные ви-
русы A/H1N1 и продолжают циркулировать по
всему миру в качестве сезонного вируса гриппа
вместе с A/H3N2 и вирусами типа B.
Изучение молекулярной эволюции вирусов
гриппа предоставляет важную информацию по
их генезису и особенностям распространения
в разных странах мира [6]. Ежегодно вирусы
гриппа вызывают эпидемии в обход уже суще-
ствующему иммунитету благодаря постоянной
мутационной изменчивости (антигенный дрейф)
в гемагглютинине (HA), так как он является ос-
новной целью для антител, а также изменениям
в нейраминидазе (NA) и М-белке, связанных с
чувствительностью к противовирусным препа-
ратам [7]. Поэтому большинство исследований
молекулярно-генетического строения НА и NA
посвящено их эволюционным изменениям в ре-
зультате появления новых значимых мутаций
[8-12].
Огромную роль в проблеме борьбы с грип-
пом играет разработка новых методов диа-
гностики, что побуждает обращаться к поиску
методических решений для вирусологических
исследований с привлечением современных до-
стижений различных областей науки, в том числе
материалов и методов для создания тест-систем.
Данные об эпидемически актуальных штаммах
необходимы как для расшифровки причин теку-
щих и прогнозирования грядущих эпидемий, так
и для проведения профилактических и противо-
эпидемических мероприятий, в том числе – раз-
работки новых вакцинных и диагностических
препаратов.
Целью данного исследования явилось опре-
деление молекулярно-генетических характери-
стик вирусов гриппа, циркулировавших в Ка-
захстане в течение эпидемиологического сезона
2017-2018 гг.
Материал и методы
Исследованные вирусы. В работе были ис-
пользованы штаммы вирусов гриппа А и В, вы-
деленные на клеточной культуре МDCK в эпи-DCK в эпи- в эпи-
демический сезон 2017-2018 гг.
Выделение вирусной РНК проводили с по-
мощью коммерческого набора PureLink RNA
MiniKit (LifeTechnologies, США) с рекоменда-
циями производителя.
Полимеразно-цепная реакция с обратной
транскрипцией (ОТ/ПЦР) проводили с исполь-
зованием оригинальных праймеров (Лондон)
и коммерческого набора SuperScript® III One-
Step RT-PCR System with Platinum® Taq DNA
Polymerase (LifeTechnologies, США) на термо-
циклере Veriti (Applied Biosystems, США).
Электрофорез ДНК проводили, используя
коммерческий комплект реагентов для электро-
форетической детекции продуктов амплифика-
ции в агарозном геле «ЭФ»-200 (Ампли Сенс,
Россия) в 1,7 % агарозном геле с трис-боратным
буфером концентрированного с бромидом
этидия.
Для выделения ДНК из геля использовали
коммерческий набор QI Aquick Gel Extraction
Kit (QIAGEN, Германия), а для чистых фраг-
ментов при электрофорезе использовали ком-
мерческий набор PureLink PCR Purication Kit
(LifeTechnologies, США).
Определение концентрации двуцепочечной
ДНК проводились использованием спектроф-
53
ISSN 1563-034Х Eurasian Journal of Ecology. №1 (58). 2019
еISSN 2617-7358
Сагымбай А.Б. и др.
луориметра Qubit и набора реагентов Qubit HS
dsDNAkit (Life Technologies, США).
Секвенирование полноразмерных сегментов
генома вируса гриппа осуществляли на авто-
матическом генетическом анализаторе ABIGA
3500 (Applied Biosystems, США) с помощью
коммерческого набора Big Dye Terminator Kit
v3.1 (Applied Biosystems, США).
Очистку продуктов секвенирования осущест-
вляли с помощью набора Big Dye XTerminator
Kit (Applied Biosystems, США) в соответствии с
инструкцией производителя.
Филогенетический анализ. Анализ нуклео-
тидных и соответствующих им аминокислотных
последовательностей, множественное выравни-
вание проводили с использованием программ-
ного обеспечения MEGA6. Построение фило-
генетического дерева осуществляют с помощью
метода максимального правдоподобия (ML) в
реализации пакета MEGA6, используя последо-
вательности гена НА и NA актуальных вакцин-NA актуальных вакцин- актуальных вакцин-
ных штаммов и референс штаммов филогенети-
ческих групп и подгрупп вируса гриппа А и В
из международной базы данных EpiFlu GISAID.
Результаты
Для изучения молекулярно-генетической ха-
рактеристики штаммов вирусов гриппа в эпиде-
миологическом сезоне 2017-2018 гг. были про-
ведены исследования вирусов гриппа А и В на
мутации генов гемагглютинина и нейраминида-
зы. В Референс лаборатории (РЛ) по контролю
за вирусными инфекциями методом капилляр-
ного секвенирования по Сэнжеру были изучены
последовательности генов двенадцати штаммов
вируса гриппа А (подтип H1N1pdm09 – 9, под-H1N1pdm09 – 9, под-1N1pdm09 – 9, под-N1pdm09 – 9, под-1pdm09 – 9, под-pdm09 – 9, под-09 9, под-
тип H3N2 – 3) и десяти штаммов вируса гриппа
В (генотип В/Victoria 2, генотип B/Yamagata
– 8), выделенных в недозорных сайтах респу-
блики. Изоляты и клинические образцы гриппа
поступили в РЛ из вирусологических лаборато-
рий Западно-Казахстанской, Карагандинской,
Южно-Казахстанской, Восточно-Казахстан-
ской, Северо-Казахстанской, Акмолинской, Ал-
матинской областей. Данные секвенирования
опубликованы в международной базе GISAID.
Информация об образцах, исследованных мето-
дом секвенирования, приведена в таблице 1.
Таблица 1 – Информация об образцах, исследованных методом секвенирования
пп Название штамма Дата забора
материала Тип вируса
ID номер
в базе данных
GISAID
Регион
1A/WestKazakhstan/295/2018 26.12.2017 A/H3N2 Epi_ISL_309393 Западно-Казахстанская
2 A/Akmolinskaya NRL/299/2018 05.01.2018 A/H3N2 Epi_ISL_309394 Акмолинская
3A/SouthKazakhstan.NRL/302/2018 19.01.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306509 Южно-Казахстанская
4A/Karaganda.NRL/303/2018 06.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_309390 Карагандинская
5A/Karaganda.NRL/304/2018 06.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306511 Карагандинская
6A/EastKazakhstan/305/2018 22.02.2018 A/H3N2 Epi_ISL_309391 Восточно-
Казахстанская
7 A/EastKazakhstan.NRL/307/2018 22.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306563 Восточно-
Казахстанская
8 A/Karaganda.NRL/311/2018 05.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306564 Карагандинская
9 A/Karaganda.NRL/312/2018 07.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306565 Карагандинская
10 A/Karaganda.NRL/313/2018 07.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306566 Карагандинская
11 A/Karaganda.NRL/314/2018 09.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306513 Карагандинская
12 A/Karaganda.NRL/317/2018 14.02.2018 А/H1N1pdm09 Epi_ISL_306514 Карагандинская
13 B/NorthKazakhstan/322/2018 15.02.2018 B/Yamagata - Cеверо-Казахстанская
14 B/Almatinskaya.Kaz/323/2018 20.02.2018 B/Victoria Epi_ISL_309403 Алматинская
15 B/Almatinskaya.Kaz/324/2018 06.03.2018 B/Victoria - Алматинская
16 B/NorthKazakhstan/325/2018 19.02.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309396 Cеверо-Казахстанская
17 B/NorthKazakhstan/326/2018 28.02.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309395 Cеверо-Казахстанская
Вестник. Серия экологическая. №1 (58). 2019
54
Молекулярно-генетические особенности эпидемического сезона 2017-2018 гг. по гриппу в Казахстане
пп Название штамма Дата забора
материала Тип вируса
ID номер
в базе данных
GISAID
Регион
18 B/NorthKazakhstan/327/2018 27.02.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309397 Cеверо-Казахстанская
19 B/NorthKazakhstan/328/2018 26.02.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309398 Cеверо-Казахстанская
20 B/KysylordaKaz/329/2018 12.02.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309399 Кызылординская
21 B/KaragandaKaz/330/2018 22.01.2018 B/Yamagata - Карагандинская
22 B/KaragandaKaz/331/2018 03.03.2018 B/Yamagata Epi_ISL_309401 Карагандинская
Продолжение таблицы 1
Генетическая характеристика вируса грип-
па А/Н1N1pdm09
По данным филогенетического анализа все
девять секвенированных штаммов вируса грип-
па А/Н1N1pdm09 принадлежали к субклай-N1pdm09 принадлежали к субклай-1pdm09 принадлежали к субклай-pdm09 принадлежали к субклай-09 принадлежали к субклай-
ду 6В.1 и были подобны вакцинному штамму
Michigan/45/2015(H1N1) как и большинство
вирусов А/Н1N1pdm09, выявленных во многих
странах в эпидсезоне 2017-2018 гг. (рисунок 1).
Для этого субклайда отмечены характерные за-
мены S74R, T120A, S162N(+CHO), S164T, I216T
в антигенном сайте НА Sa, расположенном на
глобуле белка, рядом с рецептор-связывающим
сайтом.
Рисунок 1 – Филогенетическое дерево по гену гемагглютинину вирусов гриппа А подтипа H1N1
(метод ML, модель T92+G, бутстреп – 500 репликации). Символом « » отмечен актуальный вакцинный штамм,
символом « » – вирусы эпидемического сезона 2017/2018, секвенированные в референс-лаборатории,
символом « » – референс-штаммы филогенетических групп и подгрупп, соответственно
55
ISSN 1563-034Х Eurasian Journal of Ecology. №1 (58). 2019
еISSN 2617-7358
Сагымбай А.Б. и др.
Образцы из Карагандинской (7 обр.), Восточ-
ного-Казахстанской (1 обр.) и Северно-Казах-
станской областей (1 обр.) имели также допол-
нительные замены S9R, T137A, N179S, S181T,
S200P, A232T, T233I, T273I, P308Q, Q310K,
I312V.
Генетическая характеристика вируса грип-
па А/Н3N2
Филогенетический анализ HA-генов гриппа
H3N2 показал, что исследованные вирусы при-3N2 показал, что исследованные вирусы при-N2 показал, что исследованные вирусы при-2 показал, что исследованные вирусы при-
надлежали к двум генетическим группам – суб-
клайдам 3C.2a2 и 3С.3а.
Два штамма, относящиеся к субклайду
3C.2a2, были подобны вакцинному штамму A/
HongKong/4801/2014. (рисунок 3) и определя-
лись такими аминокислотными заменами, как
T131K, R142K, R261Q в участке НА1.
Один штамм A/EastKazakhstan/305/2018 был
отнесен к группе 3С.3а с аминокислотными за-
менами T128A (приводящий к потере потенци-
ального сайта гликозилирования, NWT в по-NWT в по- в по-
ложении 126-128 заменяется на NWA,) F159S,
K326R и был близкородственен к референс-
штамму A/Switzerland/9715293/2013.
Генетическая характеристика вируса грип-
па B.
Анализ штаммов вируса гриппа В, секве-
нированных в РЛ, показал, что 8 из 10 (80 %)
штаммов относились к линии Ямагата и были
подобны референс-штамму B/Phuket/3073/2013,
рекомендованный Всемирной организацией
здравоохранения в качестве вакцинного для
четырёхвалентных вакцин на сезон 2018-2019
гг. для северного полушария. Установлено, что
данные штаммы принадлежат к клайду 3 с ха-
рактерными аминокислотными заменами в гене
гемагглютинине (НА) –L172Q, D196N (+CHO),
M251V и нейраминидазы (NA) – I49M, R65H,
I171M, D342K, K373Q, S402P, {D463N A465T}
(+CHO) (рисунок 3).
Рисунок 2 – Филогенетическое дерево по гену гемагглютинину вирусов гриппа А подтипа H3N2
(метод ML, модель NKY+G, бутстреп – 500 репликации). Символом « » отмечен актуальный вакцинный штамм,
« » – вирусы эпидемического сезона 2017/2018, секвенированные в референс-лаборатории,
символом « » – референс-штаммы филогенетических групп и подгрупп, соответственно.
Вестник. Серия экологическая. №1 (58). 2019
56
Молекулярно-генетические особенности эпидемического сезона 2017-2018 гг. по гриппу в Казахстане
Два образца были отнесены к линии Вик-
тория и были подобны вакцинному штамму B/
Brisbane//60/2008 и принадлежали клайду 1А,
несущими двойную аминокислотную делецию
Δ162-163 с аминокислотными заменами I117V и
N129D в гене HA1 (рисунок 4).
.
Рисунок 3 – Филогенетическое дерево по гену гемагглютинину вирусов гриппа В линии Yamagata
(метод ML, модель NKY+G, бутстреп – 500 репликации). Символом « » отмечен актуальный вакцинный штамм,
« » – вирусы эпидемического сезона 2017/2018, секвенированные в референс-лаборатории,
символом « » – референс-штаммы филогенетических групп и подгрупп, соответственно.
Обсуждение
В целом, эпидемический сезон 2017-2018
гг. характеризовался параллельной циркуляци-
ей всех трех вирусов гриппа, при этом в начале
сезона доминировали вирусы гриппа А/H3N2 и
В, а c середины сезона активизировался вирус
гриппа А/H1N1pdm09 и к концу сезона имел
наибольший положительный удельный вес сре-
ди всех типов гриппа [2].
В связи с этим, для изучения молекулярно-
генетических особенностей данного сезона был
проведен генетический и филогенетический
анализ репрезентативных штаммов вирусов
гриппа, циркулировавших на территории ре-
спублики.
57
ISSN 1563-034Х Eurasian Journal of Ecology. №1 (58). 2019
еISSN 2617-7358
Сагымбай А.Б. и др.
Как показали исследования, посвященные
вирусу гриппа H1N1pdm09, в результате амин-H1N1pdm09, в результате амин-1N1pdm09, в результате амин-N1pdm09, в результате амин-1pdm09, в результате амин-pdm09, в результате амин-09, в результате амин-
кислотных замен в положении S162N(+CHO)
и S164Т создается новое потенциальное место
N-гликолизирования в позициях 162-164, амин--гликолизирования в позициях 162-164, амин-
кислотный триплет SQS заменяется на NQT, ко-SQS заменяется на NQT, ко- заменяется на NQT, ко-NQT, ко-, ко-
торый позволяет вирусу «ускользать» от спец-
ифических антител после вакцинации или ранее
перенесенной инфекции [13-14]. Такая картина
встречается у всех исследованных штаммов ви-
руса гриппа H1N1pdm09, за исключением од-H1N1pdm09, за исключением од-1N1pdm09, за исключением од-N1pdm09, за исключением од-1pdm09, за исключением од-pdm09, за исключением од-09, за исключением од-
ного штамма «A/EastKazakhstan.NRL/307/2018»
из Восточно-Казахстанской области. У данного
штамма замена в позиции N162S(-CHO) приво-N162S(-CHO) приво-162S(-CHO) приво-S(-CHO) приво-приво-
дит к потере данного сайта.
Вирусы гриппа A/H3N2 отличились значи-
тельным генетическим разнообразием иссле-
дованные вирусы принадлежали к нескольким
филогенетическим группам и подгруппам, с
преобладанием вирусов подобных вакцинному
Рисунок 4 – Филогенетическое дерево по гену гемагглютинину вирусов гриппа В линии Victoria
(метод ML, модель NKY+G, бутстреп – 500 репликации). Символом « » отмечен актуальный вакцинный штамм,
« » –вирусы эпидемического сезона 2017/2018, секвенированные в референс-лаборатории,
символом « » – референс-штаммы филогенетических групп и подгрупп, соответственно
Вестник. Серия экологическая. №1 (58). 2019
58
Молекулярно-генетические особенности эпидемического сезона 2017-2018 гг. по гриппу в Казахстане
штамму. Клайд 3C.2a, в свою очередь, характе-
ризуются заменами L3I, N144S, F159Y, K160T,
Q311H в HA1 и D160N в HA2. Aминкислотные
замены в положении S144N(+CHO) и K160T
(+CHO) приводят к появлению новых потен-CHO) приводят к появлению новых потен-) приводят к появлению новых потен-
циальных мест N-гликолизирования в пози-N-гликолизирования в пози--гликолизирования в пози-
циях 144-146 и 159-161, аминкислотные три-
плеты SSS заменяются на NSS, NYK на NYT
соответственно. Вирусы, относящиеся к клайду
3C.2a, циркулируют в северном полушарии с
2013-14 гг., а с сезона 2014-2015 гг. вирусы дан-
ного клайда преобладали среди всех циркулиру-
ющих вирусов гриппа, что по сообщениям ВОЗ
характерно и для эпидемиологического сезона
2017-2018 гг.
Стоит отметить, что для вируса гриппа А
подтипа H3N2, циркулирующего в человеческой
популяции более 40 лет, показано накопление
сайтов N-гликозилирования преимущественно
в гидрофильной голове гемагглютинина. При-
соединенные к гемагглютинину гликаны пре-
дотвращают связывания с антителами in vitro, а
удаление сайтов гликозилирования или ингиби-
рование гликозилирования восстанавливает спо-
собность антител связываться гемагглютинином
[15-16]. Роль гликанов в ускользании от иммун-
ной системы определяется их низкой иммуно-
генностью, которая, в свою очередь, связана с
низкой аффинностью взаимодействия гликан-
белок, разнообразием непостоянства конформа-
ции гликанов, а также иммунологической толе-
рантностью [17-18].
Также было отмечено, что эпидемический
сезон 2017–2018 гг. характеризовался совмест-
ной циркуляцией вирусов гриппа В Викториан-
ской и Ямагатской эволюционных линий.
По литературным данным, с 1988 г. про-
изошло «раздвоение» популяции вируса грип-
па B на две антигенно различные ветви – В/
Виктория/2/87-подобные и В/Ямагата/16/88-
подобные. С тех пор вирус гриппа В эволю-
ционирует двумя социркулирующими эво-
люционными линиями [19-20]. В результате
исследования было установлено, что преоб-
ладающая часть выявленных вирусов гриппа
В на территории Казахстана принадлежала к
линии B/Yamagata. Данные филогенетического
анализа гриппа В подтвердили лабораторные
исследования методом ПЦР, направленные на
определение генетической принадлежности
линий гриппа В с использованием праймеров
CDC. На базе РЛ были изучены линии 277 об-
разцов, поступивших из дозорных и недозор-
ных сайтов республики, среди которых к линии
В/Yamagata были отнесены 263 (95%) образца
и к линии В/Victoria 14 (5%) образцов. Стоит
отметить, что в эпидемиологическом сезоне
2017-2018 гг. вирусы гриппа В линии Виктория
имели аминокислотные делеции Δ162-163, ко-
торые оказывают заметное влияние на антиген-
ные свойства вирусов.
Выводы
Таким образом, нами было изучено молеку-
лярно-генетическое разнообразие вирусов грип-
па А и В, циркулировавших в Казахстане в 2017–
2018 гг. По данным филогенетического анализа,
практически все исследованные штаммы были
филогенетически близки к рекомендованным
ВОЗ вакцинным штаммам. Изученные штаммы
вируса гриппа А/Н1N1pdm09 принадлежали к
клайду 6В.1, как и в прошлом эпидемиологиче-
ском сезоне 2016-2017 гг. Анализ секвенирован-
ных последовательностей вируса гриппа H3N2
всего эпидемиологического сезона позволяет
сделать вывод о совместной циркуляции штам-
мов вирусов гриппа А подтипа H3N2, принад-H3N2, принад-3N2, принад-N2, принад-2, принад-
лежащих к нескольким филогенетическим груп-
пам и подгруппам с преобладанием вирусов,
подобные вакцинному штамму (A /HongKong
/4801/2014).
Было также установлено, что преобладаю-
щая часть выявленных вирусов гриппа В на тер-
ритории республики принадлежала к линии B/
Yamagata и относилась к клайду 3, не входяще-
му в состав вакцины на эпидемиологический се-
зон 2017-2018 гг. В то же время в гемагглютини-
не ряда казахстанских штаммов вируса гриппа
были обнаружены уникальные аминокислотные
замены, в том числе приводящие к потере потен-
циальных сайтов гликозилирования.
Особенности эволюционной изменчивости
современных вирусов гриппа создают трудно-
сти при прогнозировании этого компонента в
составе сезонных гриппозных вакцин. Резуль-
таты проведенного исследования подтверждают
важность непрерывного мониторинга мутацион-
ной изменчивости и филогенетического анализа
циркулирующих штаммов в выборе вакцинных
штаммов для специфической профилактики
гриппа и противовирусных препаратов.
59
ISSN 1563-034Х Eurasian Journal of Ecology. №1 (58). 2019
еISSN 2617-7358
Сагымбай А.Б. и др.
Литература
WHO, 2018. Inuenza (Seasonal). Available online. [Электронный ресурс] – Режим доступа: URL: http://www.who.int/
news-room/fact-sheets/detail/inuenza-(seasonal) (дата обращения 12.12.2018 г.).
Смагул А.М., Нусупбаева Г.Е., Айкимбаев А.М., Березин В.Э., Кливлеева Н.Г. Надзор над гриппом и острыми
респираторными инфекциями в Казахстане // Медицина (Алматы). – 2018. – T. 194. – №8. – С. 25-31.
Neumann G., Noda T., Kawaoka Y. Emergence and pandemic potential of swine-origin H1N1 inuenza virus // Nature. – 2009.
– Vol. 459, No 7249. – P. 931.
Raymond F. L., Caton A.J., Cox N.J. et al. et al. The antigenicity and evolution of inuenza H1 haemagglutinin, from 1950–
1957 and 1977–1983: two pathways from one gene //Virology. – 1986. – Vol. 148, No 2. – P. 275-287.
Glinsky G. V. Genomic analysis of pandemic (H1N1) 2009 reveals association of increasing disease severity with emergence of
novel hemagglutinin mutations // Cell cycle. – 2010. – Vol. 9, No 5. – P. 958-970.
Report prepared for the WHO annual consultation on the composition of inuenza vaccine for the Northern Hemisphere
2018 2019. Worldwide Inuenza Centre the Francis Crick Institute Mill Hill Laboratory London. [Электронный ресурс]
Режим доступа: URL: https://www.who.int/inuenza/vaccines/virus/recommendations/2018_19_north/en/ (дата обращения
15.01.2019 г.).
Осидак Л.В., Дриневский В.П., Ерофеева М.К. и др. Грипп как проблема XXI века // Детские инфекции. – 2009. – Т. 8.
– С. 3-9.
Лобова Т.Г., Прокопец А.В., Комиссаров А.Б и др. Эволюционная изменчивость вирусов гриппа B, циркулировавших в
Российской Федерации с 2005 по 2012 г // Вопросы вирусологии. – 2012. – Т. 57. – №. 6.
Koel B. F.Mögling R., Chutinimitkul S. et al. Identication of amino acid substitutions supporting antigenic change of A (H1N1)
pdm09 viruses // Journal of virology. – 2015. – P. JVI.02962-14.
Korsun N., Angelova S., Gregory V., Daniels R. et al. Antigenic and genetic characterization of inuenza viruses circulating in
Bulgaria during the 2015/2016 season. Infection, Genetics and Evolution . – 2017. – Vol. 49. – P. 241-250.
Lin J. H. et al. Molecular epidemiology and antigenic analyses of inuenza A viruses H3N2 in Taiwan // Clinical Microbiology
and Infection. – 2011. – Vol. 17, No 2. – P. 214-222.
Ampofo W. K., Azziz-Baumgartner, E., Bashir, U. et al. Strengthening the inuenza vaccine virus selection and development
process: Report of the 3rd WHO Informal Consultation for Improving Inuenza Vaccine Virus Selection held at WHO headquarters,
Geneva, Switzerland, 1–3 April 2014 // Vaccine. – 2015. – Vol. 33, No 36. – P. 4368-4382.
Komissarov A. et al. Rapid spread of inuenza A (H1N1) pdm09 viruses with a new set of specic mutations in the internal
genes in the beginning of 2015/2016 epidemic season in Moscow and Saint Petersburg (Russian Federation) // Inuenza and other
respiratory viruses. – 2016. – Vol. 10, No 4. – P. 247-253.
Ramadhany R. et al. Tropism of pandemic 2009 H1N1 inuenza A virus // Frontiers in microbiology. – 2012. – Vol. 3.– P. 128.
Abe Y., Takashita E., Sugawara K., Matsuzaki Y., Muraki Y.,Hongo S. Effect of the addition of oligosaccharides on the biological
activities and antigenicity of inuenza A/H3N2 virus hemagglutinin // Journal of virology. – 2004. – Vol. 78, No 18. – P. 9605-9611.
Skehel J.J., Stevens D. J., Daniels R. S., Douglas A. R., Knossowtt M. A carbohydrate side chain on hemagglutinins of Hong
Kong inuenza viruses inhibits recognition by a monoclonal antibody // Proc. Natl. Acad. Sci. – 1984. – Vol. 81.– P.1779-1783.
Crispin M. Targeting host-derived glycans on enveloped viruses for antibody-based vaccine design // Curr OpinVirol. – 2015.
– Vol.11. – P. 63–69.
An Y., McCullers J. A., Alymova I., Parsons L. M., Cipollo, J. F. Glycosylation analysis of engineered H3N2 inuenza A virus
hemagglutinins with sequentially added historically relevant glycosylation sites // Journal of proteome research. – 2015. – Vol. 14,
No 9. – P. 3957-3969.
Hay A. J. Gregory V., Douglas A. R., Lin Y. P. The evolution of human inuenza viruses // Philosophical Transactions of the
Royal Society of London. Series B. – 2001.– Vol. 356, No 1416. – P. 1861.
Soсan M., Prosenc K., Uсakar V., Berginc N. A comparison of the demographic and clinical characteristics of laboratory-
conrmed inuenza B Yamagata and Victoria lineage infection // Journal of Clinical Virology. – 2014. – Vol. 61, No 1. – P. 156-160.
References
Abe Y., Takashita E., Sugawara K., Matsuzaki Y., Muraki Y., Hongo S. (2004) Effect of the addition of oligosaccharides on the
biological activities and antigenicity of inuenza A/H3N2 virus hemagglutinin. Journal of virology, vol. 78, no 18, pp. 9605-9611.
Ampofo W. K., Azziz-Baumgartner, E., Bashir, U. et al. (2015) Strengthening the inuenza vaccine virus selection and develop-
ment process: Report of the 3rd WHO Informal Consultation for Improving Inuenza Vaccine Virus Selection held at WHO head-
quarters, Geneva, Switzerland, 1–3 April 2014. Vaccine, vol. 33, no 36, pp. 4368-4382.
An Y., McCullers J.A., Alymova I., Parsons L.M., Cipollo, J.F. (2015) Glycosylation analysis of engineered H3N2 inuenza A
virus hemagglutinins with sequentially added historically relevant glycosylation sites. Journal of proteome research, vol. 14, no 9,
pp. 3957-3969
Crispin M. (2015) Targeting host-derived glycans on enveloped viruses for antibody-based vaccine design. Curr Opin Virol,
vol. 11, pp. 63–69.
Glinsky G. V. (2010) Genomic analysis of pandemic (H1N1) 2009 reveals association of increasing disease severity with emer-
gence of novel hemagglutinin mutations. Cell cycle, vol. 9, no 5, pp. 958-970.
Вестник. Серия экологическая. №1 (58). 2019
60
Молекулярно-генетические особенности эпидемического сезона 2017-2018 гг. по гриппу в Казахстане
Hay A. J. Gregory, V., Douglas, A. R., & Lin, Y. P. (2001) The evolution of human inuenza viruses. Philosophical Transac-
tions of the Royal Society of London. Series B, vol. 356, no 1416. – pp. 1861.
Koel B. F. Mögling R., Chutinimitkul S. et al. (2015) Identication of amino acid substitutions supporting antigenic change of
A (H1N1) pdm09 viruses. Journal of virology, pp. JVI.02962-14.
Komissarov A. et al. (2016) Rapid spread of inuenza A (H1N1) pdm09 viruses with a new set of specic mutations in the
internal genes in the beginning of 2015/2016 epidemic season in Moscow and Saint Petersburg (Russian Federation). Inuenza and
other respiratory viruses, vol. 10, no 4, pp. 247-253.
Korsun Neli, Angelova S., Gregory V., Daniels R. et al. (2017) Antigenic and genetic characterization of inuenza viruses cir-
culating in Bulgaria during the 2015/2016 season. Infection, Genetics and Evolution, vol. 49, pp. 241-250.
Lin J. H. et al. (2011) Molecular epidemiology and antigenic analyses of inuenza A viruses H3N2 in Taiwan. Clinical Micro-
biology and Infection, vol. 17, no 2, pp. 214-222.
Lobova T.G., Prokopets A.V., Komissarov A.B et al. (2012) Evolyutsionnayai zmenchivost virusov grippa B, tsirkulirovavshih
v Rossiyskoy Federatsii s 2005 po 2012 g [Evolutionary variability of inuenza B viruses circulating in the Russian Federation from
2005 to 2012] . Virology issues, vol. 57, no 6.
Neumann G., Noda T., Kawaoka Y. (2009) Emergence and pandemic potential of swine-origin H1N1 inuenza virus. Nature,
vol. 459, no 7249, pp. 931.
Osidak L.V., Drinevskiy V.P., Erofeeva M.K. et al. (2009). Gripp kak problema XXI veka [Inuenza as a problem of the XXI
century]. Children’s infections, vol. 8, pp. 3-9.
Ramadhany R. et al. (2012) Tropism of pandemic 2009 H1N1 inuenza A virus. Frontiers in microbiology, vol. 3, pp. 128.
Raymond F.L., Caton A.J., Cox N.J. et al. (1986) The antigenicity and evolution of inuenza H1 haemagglutinin, from 1950–
1957 and 1977–1983: two pathways from one gene. Virology, vol. 148, no 2, pp. 275-287.
Report prepared for the WHO annual consultation on the composition of inuenza vaccine for the Northern Hemisphere 2018 –
2019. Worldwide Inuenza Centre the Francis Crick Institute Mill Hill Laboratory London. Available online: https://www.who.int/
inuenza/vaccines/virus/recommendations/2018_19_north/en/
Skehel J.J., Stevens D. J., Daniels R. S., Douglas A. R., Knossowtt M. (1984) A carbohydrate side chain on hemagglutinins of
Hong Kong inuenza viruses inhibits recognition by a monoclonal antibody. Proc. Natl. Acad. Sci., vol. 81, pp. 1779-1783.
Smagul A.M., Nusupbaeva G.E., Aykimbaev A.M., Berezin V.E., Klivleeva N.G. (2018). Nadzornadgrippom i ostryimi respi-
ratornyimi infektsiyami v Kazahstane [Surveillance of inuenza and acute respiratory infections in Kazakhstan]. Medicine (Almaty),
vol. 194, no 8, pp. 25-31.
Soсan M. Prosenc K., Uсakar V., Berginc, N. (2014) A comparison of the demographic and clinical characteristics of laborato-
ry-conrmed inuenza B Yamagata and Victoria lineage infection. Journal of Clinical Virology, vol. 61, no 1, pp. 156-160.
WHO, 2018. Inuenza (Seasonal). Available online: http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/inuenza-(seasonal) (ac-
cessed on 12 December 2018).
ResearchGate has not been able to resolve any citations for this publication.
Article
Full-text available
Influenza virological surveillance is an essential tool for early detection of novel genetic variants of epidemiologic and clinical significance. The aim of this study was to determine the antigenic and molecular characteristics of influenza viruses circulating in Bulgaria during the 2015/2016 season. The season was characterized by dominant circulation of A(H1N1)pdm09 viruses, accounting for 66% of detected influenza viruses, followed by B/Victoria-lineage viruses (24%) and A(H3N2) viruses (10%). All sequenced influenza A(H1N1)pdm09, A(H3N2) and B/Victoria-lineage viruses belonged to the 6B.1, 3C.2a and 1A genetic groups, respectively. Amino acid analysis of 57 A(H1N1)pdm09 isolates revealed the presence of 16 changes in hemagglutinin (HA) compared to the vaccine virus, five of which occurred in four antigenic sites, together with 16 changes in neuraminidase (NA) and a number of substitutions in proteins MP, NP, NS and PB2. Despite the many amino acid substitutions, A(H1N1)pdm09 viruses remained antigenically closely related to A/California/7/2009 vaccine virus. Bulgarian A(H3N2) strains (subclade 3C.2a) showed changes at 11 HA positions four of which were located in antigenic sites A and B, together with 6 positions in NA, compared to the subclade 3C.3a vaccine virus. They contained unique HA1 substitutions N171K, S312R and HA2 substitutions I77V and G155E compared to Bulgarian 3C.2a viruses of the previous season. All 20 B/Victoria-lineage viruses sequenced harboured two substitutions in the antigenic 120-loop region of HA, and 5 changes in NA, compared to the B/Brisbane/60/2008 vaccine virus. The results of this study reaffirm the continuous genetic variability of circulating seasonal influenza viruses and the need for continued systematic antigenic and molecular surveillance.
Article
Full-text available
The influenza virus surface glycoprotein hemagglutinin (HA) is the major target of host neutralizing antibodies. The oligosaccharides of HA can contribute to HA's antigenic characteristics. After a leap to humans from a zoonotic host, influenza can gain N-glycosylation sequons over time as part of its fitness strategy. This glycosylation expansion has not been studied at the structural level. Here we examine HA N-glycosylation of H3N2 virus strains that we have engineered to closely mimic glycosylation sites gained between 1968 through 2002 starting with pandemic A/Hong Kong/1/68 (H3N2: HK68). HAs studied include HK68 and engineered forms with 1, 2 and 4 added sites. We have used: nano-LC/MSE for glycopeptide composition, sequence and site occupancy analysis, and MALDI-TOF MS permethylation profiling for characterization of released glycans. Our study reveals that: 1) the majority of N-sequons are occupied at ≥90%, 2) the class and complexity of the glycans varies by region over the landscape of the proteins, 3) Asn 165 and Asn 246, which are associated with interactions between HA and SP-D lung collectin, are exclusively high mannose type. Based on this study and previous reports we provide structural insight as to how the immune system responses may differ depending on HA glycosylation.
Article
Full-text available
Despite long-recognized challenges and constraints associated with their updating and manufacture, influenza vaccines remain at the heart of public health preparedness and response efforts against both seasonal and potentially pandemic influenza viruses Globally coordinated virological and epidemiological surveillance is the foundation of the influenza vaccine virus selection and development process. Although national influenza surveillance and reporting capabilities are being strengthened and expanded, sustaining and building upon recent gains has become a major challenge Strengthening the vaccine virus selection process additionally requires the continuation of initiatives to improve the timeliness and representativeness of influenza viruses shared by countries for detailed analysis by the WHO Global Influenza Surveillance and Response System (GISRS)
Article
Full-text available
Unlabelled: The majority of currently circulating influenza A(H1N1) viruses are antigenically similar to the virus that caused the 2009 influenza pandemic. However, antigenic variants are expected to emerge as population immunity increases. Amino acid substitutions in the hemagglutinin protein can result in escape from neutralizing antibodies, affect viral fitness, and change receptor preference. In this study, we constructed mutants with substitutions in the hemagglutinin of A/Netherlands/602/09 in an attenuated backbone to explore amino acid changes that may contribute to emergence of antigenic variants in the human population. Our analysis revealed that single substitutions affecting the loop that consists of amino acid positions 151 to 159 located adjacent to the receptor binding site caused escape from ferret and human antibodies elicited after primary A(H1N1)pdm09 virus infection. The majority of these substitutions resulted in similar or increased replication efficiency in vitro compared to that of the virus carrying the wild-type hemagglutinin and did not result in a change of receptor preference. However, none of the substitutions was sufficient for escape from the antibodies in sera from individuals that experienced both seasonal and pandemic A(H1N1) virus infections. These results suggest that antibodies directed against epitopes on seasonal A(H1N1) viruses contribute to neutralization of A(H1N1)pdm09 antigenic variants, thereby limiting the number of possible substitutions that could lead to escape from population immunity. Importance: Influenza A viruses can cause significant morbidity and mortality in humans. Amino acid substitutions in the hemagglutinin protein can result in escape from antibody-mediated neutralization. This allows the virus to reinfect individuals that have acquired immunity to previously circulating strains through infection or vaccination. To date, the vast majority of A(H1N1)pdm09 strains remain antigenically similar to the virus that caused the 2009 influenza pandemic. However, antigenic variants are expected to emerge as a result of increasing population immunity. We show that single amino acid substitutions near the receptor binding site were sufficient to escape from antibodies specific for A(H1N1)pdm09 viruses but not from antibodies elicited in response to infections with seasonal A(H1N1) and A(H1N1)pdm09 viruses. This study identified substitutions in A(H1N1)pdm09 viruses that support escape from population immunity but also suggested that the number of potential escape variants is limited by previous exposure to seasonal A(H1N1) viruses.
Article
Full-text available
Substitutions at the receptor-binding site of the pandemic H1N1 2009 influenza A virus (H1N1pdm) hemagglutinin (HA) gene may be critical in determining whether a virus binds to human or avian receptors. Previous reports suggest that HA Gly²²² and/or Arg²²³ allow viruses to bind preferentially to the α2,3-linked sialic acid found in avian species. We also demonstrated that serial passaging of influenza A virus in embryonated chicken eggs increased viral growth 32- to 64-fold, coincident with the increased prevalence of Gly²²² or Arg²²³ in HA protein (Yasugi et al., 2012). In this study, we showed that the minor genotype of α2,3-linkage-tropic viruses in upper airways became dominant after passaging through chicken eggs. Viruses possessing HA containing N125D-Q223R, N125D-D187E-Q223R, K119N-D222G, and K119N-N129S-D222G, were detected in both clinical specimens and egg-passaged samples. These results might suggest that egg-adapted viruses, likely represented by α2,3-linkage-tropic virus, were also present in human upper airways as a minor population and transmitted in humans during the outbreak of H1N1pdm.
Article
Full-text available
Experimental studies and epidemiological observations during the first wave of the pandemic (H1N1) 2009 suggest that a novel influenza A (H1N1) virus has significant pandemic potential based on high transmissibility of the virus. Substantial uncertainty remains regarding evolution of the clinical severity of this pandemic during the transition to the second wave which is currently underway in the Northern Hemisphere. We carried-out analysis of large volume of clinical, epidemiological and genomics data for assessment of evolution of the current pandemic in United States, Canada, United Kingdom, Australia and Japan based on official reports of public health agencies of corresponding countries. Analysis of reported sequences of virus strains isolated from postmortem samples indicates that 42.9% of individuals who died from laboratory-confirmed cases of the pandemic (H1N1) were infected with the hemagglutinin (HA) Q310H mutant virus. Overall, six of seven (86%) of virus isolates recovered from the necropsy samples have at least one mutation within the HA 301-316 or HA 219-240 regions. During the second wave of the pandemic (H1N1) 2009, there is an increased number of reported double mutant virus isolates with mutations within both of these HA regions. Mutations within HA 219-240 region at the position D239 (D239E/G/N) are reported with higher frequency. In addition, D239G mutants were detected more frequently in viruses isolated from patients with fatal outcomes and in isolates from lungs. Multiple viral isolates with the novel HA 301-316 mutations (I312V and P314S) have been documented. Statistically significant increase of detection of mutant viruses and H1N1-related death rates is documented in July-September reporting time periods. Our analysis seems to indicate that evolution of current pandemic is associated with notable changes in mortality rate among hospitalized patients and increasing number of reported cases of novel mutations of HA gene. Recently emerged HA mutants are: (1) detected in large proportion of virus isolates recovered from the postmortem samples; (2) documented in multiple independent reports around the world; (3) expanding within global viral population; (4) manifesting spatial and temporal patterns of association with increased mortality rate of hospitalized patients. Identification of candidate virus mutants with potential association to increasing disease severity should facilitate clinical and experimental testing of the validity of both "antigenic drift" and increase virulence hypotheses. The results of these follow-up experiments may have a significant impact on ultimate outcomes of current pandemic. Our analysis indicates the urgent need for international surveillance systems that track disease severity and individual patient influenza sequence data in a representative fashion. Information gained from this type of surveillance will direct experimental work that assesses influenza strainspecific features of virulence and transmissibility through carefully designed and timely executed laboratory studies. Practical implementation of these surveillance systems would facilitate the timely evidence-based resolution of critically important relationships between the antigenic drift of mutant strains and immunogenicity of existing vaccines which should be assessed in the laboratory setting during the course of the ongoing pandemic.
Article
Influenza viruses are constantly evolving posing a significant threat for public health, therefore constant monitoring of genetic and antigenic properties is required for detection of newly emerging strains and annual revision of influenza vaccine composition. WHO-recognized National Influenza Centers (NIC) in Moscow and Saint-Petersburg collect and analyze information on the influenza activity in Russian Federation, perform antigenic and genetic analysis of circulating strains. This article is protected by copyright. All rights reserved.
Article
The surface of enveloped viruses can be extensively glycosylated. Unlike the glycans coating pathogens such as bacteria and fungi, glycans on viruses are added and processed by the host-cell during biosynthesis. Glycoproteins are typically subjected to α-mannosidase processing and Golgi-mediated glycosyltransferase extension to form complex-type glycans. In envelope viruses, exceptions to this default pathway are common and lead to the presence of oligomannose-type glycan structures on the virion surface. In one extreme example, HIV-1 utilises a high density of glycans to limit host antibody recognition of protein. However, the high density limits glycan processing and the resulting oligomannose structures can be recognised by broadly neutralising antibodies isolated from HIV-1 infected patients. Here we discuss how divergence from host-cell glycosylation can be targeted for vaccine design. Copyright © 2015. Published by Elsevier B.V.
Article
Clin Microbiol Infect 2011; 17: 214–222 The severity of an influenza epidemic season may be influenced not only by variability in the surface glycoproteins, but also by differences in the internal proteins of circulating influenza viruses. To better understand viral antigenic evolution, all eight gene segments from 44 human H3N2 epidemic strains isolated during 2004–2008 in Taiwan were analyzed to provide a profile of protein variability. Comparison of the evolutionary profiles of the HA, NA and PB2 genes of influenza A (H3N2) viruses indicated that they were derived from a group of H3N2 isolates first seen in 2004. However, the PA, M and PB1 genes were derived from a different group of H3N2 isolates from 2004. Tree topology revealed the NP and NS genes could each be segregated into two groups similar to those for the polymerase genes. In addition, new genetic variants occurred during the non-epidemic period and become the dominant strain after one or two seasons. Comparison of evolutionary patterns in consecutive years is necessary to correlate viral genetic changes with antigenic changes as multiple lineages co-circulate.
Article
Influenza viruses cause annual epidemics and occasional pandemics that have claimed the lives of millions. The emergence of new strains will continue to pose challenges to public health and the scientific communities. A prime example is the recent emergence of swine-origin H1N1 viruses that have transmitted to and spread among humans, resulting in outbreaks internationally. Efforts to control these outbreaks and real-time monitoring of the evolution of this virus should provide us with invaluable information to direct infectious disease control programmes and to improve understanding of the factors that determine viral pathogenicity and/or transmissibility.