Trichodinds ectoparasites (Cilophora: Peritrichia) of Clarias gariepinus (Pisces: Clariidae) cultured in Cuba

Abstract

The increase of trichodinids ectoparasite in the farming system is a potential epizootic risk that conduces to a big economical loss with big mortalities of fishes. The juveniles of Clarias gariepinus cultivated in cement basins (3,5 m2) were parasitological examined in October 2007 and November 2008, that revealed high parasites intensity by Trichodina spp (400–1000 Trichodina/infested fish)
with a 100 % prevalence. Two species are identified affecting skin: Trichodina acuta Lom, 1961, and T. heterodentata, Duncan, 1977, the last one is first report from Cuba. The ecological parameters of the infection (prevalence and parasites intensity) was estableced by Margolis et al. (1982). The specimens were tinted using the technique of impregnation argéntic of Klein for the observation of the adhesive disk and with Giemsa for macro and micronucleus. Digital Imagens and datas morfometric are introduced for each species. This study constitutes the first report of trichodinids for the Clarias gariepinus species in Cuba.

Full text

Journal AcuaCuba 13(2):39-48 (2011)
ISSN.1608-0467/RNPS.0373
For citation: Prats, L. F., Martinez, P. M., & Dominguez, P. A. (2011). Trichodinids
ectoparasites (Ciliophora: Peritrichia) of Clarias gariepinus (Pisces: Clariidae) cultured in Cuba.
Journal AcuaCuba 13(2):39–48.
_________________________________________________________________
Tricodinidos ectoparásitos (Cilophora: Peritrichia) de Clarias gariepinus (Pisces: Clariidae)
cultivadas en Cuba.
Trichodinds ectoparasites (Cilophora: Peritrichia) of Clarias gariepinus (Pisces: Clariidae)
cultured in Cuba.
Fernando Lucas Prats León1 -Mercedes Martínez Pérez1-Arnold Domínguez Palacios2
1 Centro de Investigaciones Pesquera, Laboratorio de Parasitología. Calle 246 / 5 ta Avenida y Mar,
Barlovento, Santa Fé, La Habana 19100, Cuba. e-mail: lucas@cip.alinet..cu
2 Grupo Territorial LABIOFAM, Sucursal La Habana, Cuba.
Resumen
El incremento de tricodinidos ectoparásitos en los sistemas de cultivo constituye un riesgo
epizoótico potencial que conlleva a grandes pérdidas económicas provocadas por altas mortalidades
de peces. Se realizó un examen parasitológico en los meses de Octubre - 2007 y noviembre – 2008,
en alevines de Clarias gariepinus (Burchell, 1822) cultivadas en estanques de cemento (3,5 m2),
que reveló la presencia de altas intensidades de parasitación por Trichodina spp. (400–1000
Trichodina/pez infestado) con una prevalencia del 100%. Afectando piel se identificaron dos
especies de Trichodinas: Trichodina acuta Lom, 1961, y T. heterodentata Duncan, 1977; esta
última representa primer reporte para Cuba. Los parámetros ecológicos de la infección (prevalencia
e intensidad de parasitación) se establecieron acorde a Margolis et al. (1982). Los especímenes
fueron teñidos usando la Técnica de impregnación argéntica de Klein para la observación del disco
adhesivo y con Giemsa para macro y micronúcleos. Imágenes digitales y datos morfométricos son
presentados para cada especie. Este estudio constituye el primer reporte de tricodinidos para la
especie Clarias gariepinus en Cuba.
Palabras Claves: Tricodinidos; Clarias gariepinus; Trichodina acuta¸ Trichodina heterodentata;
Cuba.
Abstract
The increase of trichodinids ectoparasite in the farming system is a potential epizootic risk that
conduces to a big economical loss with big mortalities of fishes. The juveniles of Clarias gariepinus
cultivated in cement basins (3,5 m2) were parasitological examined in October 2007 and November
2008, that revealed high parasites intensity by Trichodina spp (400–1000 Trichodina/infested fish)

with a 100 % prevalence. Two species are identified affecting skin: Trichodina acuta Lom, 1961,
and T. heterodentata, Duncan, 1977, the last one is first report from Cuba. The ecological
parameters of the infection (prevalence and parasites intensity) was estableced by Margolis et al.
(1982). The specimens were tinted using the technique of impregnation argéntic of Klein for the
observation of the adhesive disk and with Giemsa for macro and micronucleus. Digital Imagens and
datas morfometric are introduced for each species. This study constitutes the first report of
trichodinids for the Clarias gariepinus species in Cuba.
Passwords: Trichodinids; Clarias gariepinus; Trichodina acuta; Trichodina heterodentata; Cuba.
Introducción
Los protozoos parásitos representan el grupo más importante que afecta a los peces de cultivo. La
importación de diversas especies de peces con fines comerciales y de ornato, y la intensificación de
su cultivo, ha implicado la introducción de nuevos parásitos y el surgimiento y desarrollo de
enfermedades, asociadas a grandes mortalidades en granjas acuícola, con sus consecuente y
significativas pérdidas económicas (Prieto et al., 1993).
Trichodina Ehrenberg, 1838 (Protozoo: Ciliophora: Peritrichia) representa el género de la familia
Trichodinidae con mayor diversidad de especies (superior a 150), distribuidas por todo el mundo, y
considerado ectoparásitos o ectocomensales de invertebrados (crustáceos, moluscos, y cnidarios) y
vertebrados (peces y anfibios) (Arthur y Lom (1984); Van As y Bason (1989)) , capaz de proliferar
en las estaciones de cultivo cuando las condiciones ambientales son desfavorables a la población
huésped, y los peces se encuentren sometidos a altas densidades de siembra o a condiciones
nutricionales inadecuadas.
En Cuba son escasos los estudios de ciliados parásitos en peces, sólo algunos conocimientos
sistemáticos sobre tricodinidos de peces dulceacuícolas en ambientes naturales y de cultivo
realizados por Arthur y Lom (1984); Fajer y Martínez (1988); y Prieto et al. (1993). Teniendo en
cuenta la amplia distribución mundial que tienen la fauna protozoaria parásita de peces de interés
comercial y su influencia negativa en el crecimiento y coeficiente nutricional de juveniles de
diferentes especies ícticas, especialmente en sistemas de cría intensiva, consideramos importante el
conocimiento de este grupo de parásito.
Materiales y métodos
Los especímenes fueron colectados de alevines de Clarias gariepinus cultivados en estanques de
cemento de 3,5 m2 a razón de 10 000 alevines/estanque, en los meses de octubre-2007 y noviembre-
2008, procedentes del Centro de alevinaje Acuisla, Isla de La Juventud, Cuba. La longitud total
promedio de los peces fue de de 5,1 (4 – 6,3) cms. y el peso de 0,7 (0,5 – 0,9) gramos.
Se realizó un raspado total de piel al pez vivo y se preparó un frotis sobre un portaobjeto donde
previamente se colocó una gota de agua destilada; posteriormente se dejó secar. Para visualizar al
microscopio óptico (Olympus BH-2) las estructuras del disco adhesivo, los frotis secos son teñidos
con solución al 2% de nitrato de plata (AgNO3) por 10 minutos y expuestos por 20 minutos a

irradiación con luz ultravioleta (técnica de Impregnación Argéntica de Klein). Algunos frotis fueron
teñidos con Giemsa para la observación de los componentes nucleares.
Las mediciones de las trichodinas se realizaron según lo recomendado por: Lom (1958); Wellborn
(1967); Arthur y Lom (1984); Van As y Basson (1989), y Prieto et al. (1993). Las imágenes
digitales se procesaron mediante el software para el procesamiento de imágenes biológicas Motic
Images - 2000 versión 1.2. Las medidas se presentan en micrómetros (µm), de la siguiente forma:
valor promedio ± Desviación Standard (valor mín. – valor máx.).La prevalencia e intensidad de
parasitación se establecieron acorde a lo propuesto por Margolis et al., 1982.
El material examinado se encuentra depositado en las colecciones helmintológicas del Centro de
Investigaciones Pesqueras
Mediciones morfométricas
a
b
c
f
d
e
g
h
L
- y٫
- y
i
YX
S
D
+ y
a
b
c
f
d
e
g
h
L
- y٫
- y
i
YX
S
D
+ y
Figura. 1. Medidas usadas en este estudio. Abreviaturas: a = diámetro del cuerpo; b = diámetro del disco adhesivo; c =
diámetro del anillo denticular; d = diámetro del circulo central; f = ancho de la membrana marginal; e = número de
estriaciones (espinas radiales) por dentículo; g = diámetro externo del macronúcleo; h = ancho del macronúcleo; i =
ancho del micronúcleo; L = longitud entre las terminaciones del macronúcleo; +y, - y, - y٫ = diferentes posiciones del
micronúcleo en relación al macronúcleo; X = longitud de la apófisis externa (hoja); Y = longitud de la apófisis interna
(radio); S = ancho de la porción central del dentículo; D = longitud del dentículo.

Resultados
Dos especies del género Trichodina fueron identificadas infestando piel en alevines de Clarias
gariepinus (Burchell, 1822) (pez gato africano), asociadas a altas mortalidades: Trichodina acuta
Lom, 1961 y Trichodina heterodentata Duncan, 1977. La prevalencia para ambas especies fue del
100% y la intensidad de parasitación superior a los 800 tricodínidos por pez infestado
Trichodina heterodentata Duncan, 1977
Hospedero: Pez gato africano, Clarias gariepinus (Burchell, 1822).
Sitio de infección: piel y aletas
Descripción (figura 2-9) (basada en 12 especimenes de la especie): talla media, cuerpo discoidal,
típico del género, de diámetro 54,2 ± 4,3 (47,1 - 59,2) µm.; disco adhesivo con un diámetro de 47,3
± 2,9 (42,5 – 51,4) µm.; diámetro del anillo denticular de 33,3 ± 2,4 (29,5 – 36,8) µm.; número de
dentículos 23 ± 1 (22 – 25); longitud de los dentículos 9 ± 0,5 (8,3 – 9,8) µm.; longitud de la hoja
5,7 ± 0,3 (5,3 – 6,1) µm.; longitud de los radios 9 ± 0,6 (8,2 – 10,1) µm. ; anchura de la porción
central del dentículo 3,3 ± 0,4 (2,7 – 3,7) µm.; ancho de la membrana marginal 4,4 ± 0,4 ( 3,8 – 4,8)
µm.; diámetro del círculo central 12,9 ± 1,6 (9,7 – 15) µm.; el número de pins por dentículo 12 ±
1,8 (9 – 13); span del dentículo 17,2 ± 0,8 (16 – 18,5) µm. La zona adoral de los cilios forma una
espiral mayor a los 360º; macronúcleo en forma de herradura con un diámetro externo de 41,2 ±
1,2 (39,2 – 41,8) µm. y anchura de 8,2 ± 0,6 (7,8 – 9,1) µm.; distancia entre las terminaciones del
macronúcleo de 12,6 ± 0,7 (11,7 – 13,1) µm. El micronúcleo no fue detectado.
Trichodina acuta Lom, 1961
Hospedero: Pez gato africano Clarias gariepinus (Burchell, 1822)
.
Sitio de infección: piel y aletas
Descripción (figura 10-13): (basada en 10 especimenes de la especie). Cuerpo en forma de disco,
ligeramente comprimido en el centro con un diámetro de 49,4 ± 3,7 (46,7 - 52) µm.; disco adhesivo
con un diámetro de 40,8 ± 2,5 (39 – 42,5) µm.; diámetro del anillo denticular de 27,9 ± 2,3 (26,3 –
29,5) µm.; número de dentículos 19,5 ± 0,7 (19 – 20); longitud de los dentículos 8,4 ± 0,1 (8,3 –
8,5) µm.; longitud de la hoja 4,6 ± 0,7 (4,1 – 5,1) µm.; longitud de los radios 6,4 ± 0,7 (5,9 – 6,9)
µm. ; anchura de la porción central del dentículo 3,8 ± 0,6 (3,4 – 4,2) µm.; ancho de la membrana
marginal 4,9 ± 0,6 ( 4,4 – 5,3) µm.; diámetro del círculo central 13 ± 0,1 (12,9 – 13,1) µm.; el
número de pins por dentículo 10,5 ± 0,7 (10 – 11); span del dentículo 14,3 ± 1,1 (13,5 – 15,1) µm.
El aparato nuclear no se observo.

2
3
4
5
2
3
4
5
Figura 2 – 5. Trichodina heterodentata Duncan, 1977. Fotomicrografía del disco adhesivo,
anillo dentícular y dentículos; tinción con nitrato de plata (técnica de impregnación argéntica de
Klein). Magnificaciones de 1000X.

Figura 6 – 9. Trichodina heterodentata Duncan, 1977. Fotomicrografía del macronúcleo, espiral
adoral y anillo denticular; tinción con Giemsa. Ma = macronúcleo; Ea = espiral de la zona adoral (>
360o); y AD = anillo denticular. Magnificaciones de 1000X
6
7
8
9
Ma
Ea
AD
Ea

Figura 10 – 13. Trichodina acuta Lom, 1961. Fotomicrografía del disco adhesivo, anillo denticular
y dentículos.; tinción con nitrato de plata (técnica de impregnación argéntica de Klein).
Magnificaciones de 1000X.
Discusión
La taxonomía de este grupo en Cuba ha sido poco estudiada, destacándose sólo los trabajos de
Arthur y Lom (1984); Fajer y Martínez (1988); y Prieto et al. (1993). Con relación a la especie
Clarias gariepinus no se tiene referencia de las especies de tricodínidos que afectan su cultivo
desde su introducción en el año 2000 en la isla.
10
11
12
13

Los primeros reportes de especies del género Trichodina parasitando peces de agua dulce en Cuba,
fueron realizados por Arthur y Lom (1984), con la descripción de Trichodina cubanensis en piel de
Nandopsis tetracanthus (Cuvier y valenciennes, 1831) (familia Cichlidae), y Trichodina sp. en piel
de Lepomis gibbosus (Linnaeus, 1758) (familia Centrarchidae). Posteriormente Prieto et al. (1993)
describen en peces cultivados en aguas interiores las especies: T. pediculus Ehrenberg, 1838,
parasitando piel y filamentos branquiales de Oreochromis aureus Steindacher, 1864 (familia
Cichlidae), O. mossambicus Peters, 1952 y del híbrido de O. hornorum x O. mossambicus (conocida
como perca dorada); T. nigra Lom, 1960, parasitando igualmente piel y filamentos branquiales de
Aristichthys nobilis Richardson, 1844 (familia Cyprinidae), Ctenopharyngodon idella Cuvier y
Valenciennes, 1844 (familia Cyprinidae), Ictiobus cyprinellus Valenciennes, 1844 (familia
Catostomidae), I. niger Rafinesque, 1818, y de O. aureus Steindacher, 1864, y T. acuta Lom, 1961,
parasitando piel de Aristichthys nobilis Richardson, 1844, Ctenopharyngodon idella Cuvier y
Valenciennes, 1844, Ictiobus cyprinellus Valenciennes, 1844, I. niger Rafinesque, 1818, O. aureus
Steindacher, 1864, y O. mossambicus Peters, 1952.
T. heterodentata fue originalmente descrita por Duncan (1977), basado en un material colectado de
tres poblaciones de peces dulceacuícolas en cultivo pertenecientes a las familias Cichlidae
(Oreochromis mossambicus y Tilapia zillii) y Anabantidae (Trichogaster trichopterus), en las
Filipinas. Consecutivamente se ha registrado en muchas otros países (Sur África; Israel, Taiwán,
Venezuela, India; Australia) infestando diferentes familias de peces que se cultivan con fines
comerciales, de ornato, o presentes en medio natural (Cichlidae; Anabantidae; Cyprinidae;
Centrarchidae; Eleotridae; Ambassidae; Apogonidae; Poecillidae; Galaxidae; Gerreidae;
Percichthyidae; Pseudomugilidae) (Basson et al., 1983; Van As y Basson, 1986; Van As y Basson,
1989; Albaladejo y Arthur, 1989; Asmat, 2004; Dove y O'Donoghue, 2005). Van As y Basson,
(1989) asignan el posible origen de T. heterodentata en Sur África a pesar de que fue descrita en un
inicio en Filipinas, basado en colectas del parásito de especímenes de O. mossambicus, (principal
hospedero), en diferentes localidades del Sureste de África no expuestas a introducciones de peces
foráneos y donde la especie O. mossambicus es nativa.
La forma característica de los dentículos, con la hoja fuertemente falciforme y robusta terminada en
punta; radios engrosados en la base y extremos puntiagudos, porción central alargada con los
extremos redondos; además de la ausencia de ninguna inclusión central y los pins radiales
provinentes; conjuntamente con la biometría realizada a los parásitos colectados, hicieron posible la
identificación de T. hetrodentata Duncan, 1977..
Las tallas de los especímenes de T. heterodentata colectados de Clarias gariepinus resultaron más
pequeñas (54 (47,1 – 59,2) µm) que las reportadas por Duncan (1977) para O. mossambicus, Tilapia
zilli (85 (71 – 106) µm y 80 (58 – 108) µm) y Trichogaster trichopterus (93 (70 – 122) µm), en
Filipinas; el resto de las mediciones morfométricas se comportaron dentro de los rangos calculados
por Duncan (1977) en la descripción original de la especie. Con relación a los estudios biométricos
realizados por Basson et al. (1983); Van As y Basson (1986); Albaladejo y Arthur (1989); Van As y
Basson (1989); Basson y Van As (1994); Asmat (2004), y Dove, y O'Donoghue (2005); los datos
morfométricos mostrados en este trabajo resultaron semejantes con los rangos presentados por estos
autores, los que han coincidido en reconocer la enorme variabilidad morfológica de T.
heterodentata en los diferentes hospederos y localidades geográficas estudiadas.

T. acuta fue descrita originalmente por Lom (1961) en diferentes hospederos de la localidad de
Bohemia, Checoslovaquia. Considerada una de las especies de tricodínidos más amplia distribución
en peces de agua dulce (Lom, 1970). Las características morfológicas y medidas morfométricas
presentadas en este trabajo son semejantes a los mostrados por Lom (1961) en la descripción
original y en posteriores descripciones realizadas por Duncan (1977); Van As y Basson (1989);
Prieto et al. (1993); Dove y O'Donoghue (2005).
El presente trabajo añade un nuevo registro de distribución geográfica para T. heterodentata, Cuba;
además de señalar a Clarias gariepinus como un nuevo hospedero para T. acuta y T. heterodentata
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Tabla 1. Datos morfométricos de Trichodina heterodentata Duncan, 1977, presentados por Duncan (1977) (descripción original) y el
material estudiado (2009)1
Referencia
Duncan, 1977
Material estudiado (2009)
Especie
T. heterodentata Duncan,
1977
Población A
T. heterodentata Duncan,
1977
Población B
T. heterodentata Duncan,
1977
Población C
T. heterodentata Duncan,
1977
Hospedero
O. mossambicus y Tilapia
zilli
O. mossambicus
Trichogaster trichopterus
Clarias gariepinus
País
Filipinas
Filipinas
Filipinas
Cuba
Localización
piel y aletas
piel y aletas
piel
piel y aletas
Forma del cuerpo
disco
Diámetro del cuerpo
85 (71 – 106)
80 (58 – 108)
93 (70 – 122)
54.2±4,3 (47,1 - 59,2)
Diámetro disco adhesivo
56 (47 – 63)
57 (45 – 74)
67 (54 – 81)
47,3±2,9 (42,5 – 51,4)
Diámetro anillo denticular
32 (26 – 37)
36 (29 – 45)
41 (30 – 52)
33,3±2,4 (29,5 – 36,8)
Número de dentículos
23 (20 – 27)
26 (20 – 31)
27 (18 – 31)
23,5±1 (22 – 25)
Longitud del dentículo
8
9,2 (7,5 – 11)
6,3
9±0,5 (8,3 – 9,8)
Longitud de la hoja
4,1
5,7 (4,7 – 7,1)
5,5
5,7±0,3 (5,3 – 6,1)
Longitud del radio
6,9
8,1 (6,9 – 10,3)
8,2
9±0,6 (8,2 – 10,1)
Ancho. porción central
3,4
2,6 (1,4 – 3,4)
4,1
3,3±0,4 (2,7 – 3,7)
Ancho membrana marginal
2,7
4,7 (3,4 – 5,5)
4,1
4,4±0,4 ( 3,8 – 4,8)
Diámetro Círculo Central
-
-
-
12,9±1,6 (9,7 – 15)
Número de pins/ Detículos
11
10 (6 -14)
11
12,2± (9 – 13)
Span del Dentículo
-
-
-
17,2±0,8 (16 – 18,5)
Forma del Macronúcleo
U
U
U
U (Herradura)
Diámetro externo Macronúcleo
39
34 (32 – 36)
48
41,2±1,2 (39,2 – 41,8)
Ancho del Macronúcleo
-
-
-
8,2±0,6 (7,8 – 9,1)
Distancia entre las terminaciones
del macronúcleo
12
13 (8 – 18)
16
12,6±0,7 (11,7 – 13,1)
Forma del Micronúcleo
No detectado
No detectado
No detectado
oval
Espiral adoral
400°
400°
400°
> 360°
1 Todas las medidas son en micrómetros (µm).

Tabla 2. Datos morfométricos de Trichodina heterodentata Duncan, 1977, de diferentes localidades geográficas, presentados por Basson
et al. (1983); Van As y Basson (1986); Asmat (2004); Dove y O'Donoghue (2005); y el material estudiado (2009)1.
Referencia
Basson et al. (1983)
Van As y Basson (1986)
Asmat (2004)
Dove y O'Donoghue (2005)
Material estudiado (2009)
Especie
T. heterodentata
Duncan, 1977
T. heterodentata
Duncan, 1977
T. heterodentata
Duncan, 1977
T. heterodentata
Duncan, 1977
T. heterodentata
Duncan, 1977
Hospedero
Pseudocrenilabrus
philander
O. mossambicus
Anabas testudineus y
Puntius gelius
O. mossambicus;Cyprinus Carpio;
Ambassis agassizi; Glossamia aprion
gilii; Hypseleotris compressa; H. galii;
H. klunzingeri; Philypnodon
grandiceps;Galaxias maculatus; G.
olidus; Gerres sp.; Macquaria
ambigua; Gambusia holbrooki;
Poecilia reticulata; Xiphophorus
helleri; X. maculatus, y Pseudomugil
signifer.
Clarias gariepinus
País
Sur Africa
Taiwan
India
Australia
Cuba
Localización
piel y aletas
Piel, aletas, ocasionalmente
en branquias
branquias
Piel, aletas, ocasionalmente en
branquias
piel y aletas
Forma del cuerpo
disco
disco
disco
disco
disco
Diámetro del cuerpo
55,3±3,8 (47,8 – 69,1)
76,2±7,4 (62,3 – 95,2)
54,6±3,3 846,1 – 61,2)
-
54.2±4,3 (47,1 - 59,2)
Diámetro disco adhesivo
46,9±4,1 (39,5 – 59,8)
64,9±8,1 (53 – 82,6)
45,6±2,8 (41,8 – 52)
56,9 (41,2 – 89,2)
47,3±2,9 (42,5 – 51,4)
Diámetro anillo denticular
29,3±2,9 (23,2 -37,8)
40,8±4,8 (31,4 – 51,7)
30,4±26 – 33,6)
31,2 (24,7 – 37,4)
33,3±2,4 (29,5 – 36,8)
Número de dentículos
25 (22 – 29)
24 (22 – 29)
23,1±1,2 (21 – 26)
23 (21 – 26)
23,5±1 (22 – 25)
Longitud del dentículo
6,6±0,8 (5,1 – 8,6)
9,7±1 (8,1 – 11,6)
8,3±0,6 (7,6 – 9,2)
9±0,5 (8,3 – 9,8)
Longitud de la hoja
4,3±0,4 (3,4 – 5,5)
6,1±0,7 (4,7 – 7,7)
5,3±0,6 (4,1 – 7,1)
5,2 (4 – 7,4)
5,7±0,3 (5,3 – 6,1)
Longitud del radio
6,3±0,9 (4,6 – 8,1)
9,1±1,2 (6,1 – 11,3)
6,9±0,7 (5,9 – 8,2)
7,9 (5,5 – 11,2)
9±0,6 (8,2 – 10,1)
Ancho. porción central
2,7±0,3 (1,6 – 3,3)
3,9±0,6 (2,7 – 4,9)
2,8±0,4 (2 – 3,1)
3 (2,3 – 4,6)
3,3±0,4 (2,7 – 3,7)
Ancho membrana marginal
4,2±0,6 (3,2 – 6,2)
5,4±0,7 (3,9 – 7)
4,5±0,6 (3,1 – 5,6)
4,4±0,4 ( 3,8 – 4,8)
Diámetro Círculo Central
-
-
13,5±2,1 (9,2 – 17,3)
-
12,9±1,6 (9,7 – 15)
Número de pins/ Detículos
10 (9 – 13)
12 (10 – 13)
10,8±1,2 (9 – 13)
11 (10 – 13)
12,2± (9 – 13)
Span del Dentículo
-
-
15±1 (13,7 – 17,9)
17,2 12,5 – 23,9)
17,2±0,8 (16 – 18,5)
Forma del Macronúcleo
U (herradura)
C
-
-
U (Herradura)
Diámetro externo Macronúcleo
40,5± (23,7 – 53,4)
63,1±8,9 (40,8 – 71,9)
-
-
41,2±1,2 (39,2 – 41,8)
Ancho del Macronúcleo
-
-
8,2±0,6 (7,8 – 9,1)
Distancia entre las
terminaciones del macronúcleo
19,5±6,6 (7,8 – 33,8)
17,5± (9,5 – 30,7)
-
-
12,6±0,7 (11,7 – 13,1)
Forma del Micronúcleo
No detectado
No detectado
-
-
oval
Espiral adoral
400°
400°- 410°
395°- 400°
-
> 360°
1 Todas las medidas son en micrómetros (µm).

Tabla 3. Datos morfométricos de Trichodina acuta Lom, 1961, presentados por Lom (1961) (descripción original); Duncan (1977);
Abaladejo y Arthur (1989) y el material estudiado (2009)1.
Referencia
Lom (1961)
Duncan (1977)
Albaladejo y Arthur (1989)
Material estudiado (2009)
Especie
T. acuta Lom, 1961
T. acuta Lom, 1961
T. acuta Lom, 1961
T. acuta Lom, 1961
Hospedero
Diferentes especies de peces
O. mossambicus
Cyprinus carpio
Clarias gariepinus
País
Checoslovaquia
Filipinas
Indonesia
Cuba
Localización
piel y ocasionalmente en
branquias
piel y aletas
piel
piel y aletas
Forma del cuerpo
disco
disco
disco
disco
Diámetro del cuerpo
-
64 (45 – 78)
57,6±5,1 (52 - 67)
49,4±3,7 (46,7 – 52)
Diámetro disco adhesivo
42 - 53
42 (32 – 49)
47,8±5,2 (42 – 57,2)
40,8±2,5 (39 – 42,5)
Diámetro anillo denticular
23 - 32
23 (18 – 27)
30,3±3 (28,3 – 36)
27,9±2,3 (26,3 – 29,5)
Número de dentículos
18 - 21
19 (16 – 21)
18,5±0,3 (17 – 19)
19,5±0,7 (19 – 20)
Longitud del dentículo
10 - 11
7,4 (5,9 – 8,2)
8,8±0,4 (8,1 – 9,2)
8,4±0,1 (8,3 – 8,5)
Longitud de la hoja
4,5 - 6
5,3 (4,1 – 6,2)
5,5±0,4 (5 – 6)
4,6±0,7 (4,1 – 5,1)
Longitud del radio
4 - 7
5,4 (4,5 – 6,4)
6,1±0,5 (5,5 – 7)
6,4±0,7 (5,9 – 6,9)
Ancho. porción central
3 - 7
2 (1,4 – 2,7)
2,8±0,4 (2,4 – 3,5)
3,8±0,6 (3,4 – 4,2)
Ancho membrana marginal
3,5 - 5
4,1 (3 – 4,8)
5±0,1 (4,9 – 5,2)
4,9±0,6 (4,4 – 5,3)
Diámetro Círculo Central
-
-
-
13±0,1 (12,9 – 13,1)
Número de pins/ Detículos
8
8 (5 – 9)
(10 – 12)
10,5±0,7 (10 – 11)
Span del Dentículo
-
-
14,5±0,7 (13,5 – 15)
14,3±1,1 (13,5 – 15,1)
Forma del Macronúcleo
U (herradura)
U (herradura)
-
-
Diámetro externo
Macronúcleo
38 - 50
34 (32 – 36)
-
-
Ancho del Macronúcleo
-
-
-
-
Distancia entre las
terminaciones del
macronúcleo
-
13 (8 – 18)
-
-
Forma del Micronúcleo
-
oval
-
-
Espiral adoral
380º - 390º
> 360º
-
-
1 Todas las medidas son en micrómetros (µm).