FUNGOS DA RESERVA BIOLÓGICA DO TINGUÁ, RIO DE JANEIRO, BRASIL: ESPÉCIES DAS FAMÍLIAS ENTOLOMATACEAE, PHYSALACRIACEAE, PLUTEACEAE, STROPHARIACEAE E TRICHOLOMATACEAE

Abstract

4 RESUMO O inventário de fungos da ordem Agaricales (Basidiomycota, Basidiomycetes), realizado em trechos de Mata Atlântica da Reserva Biológica do Tinguá, revelou a ocorrência de 13 espécies distribuídas entre as famílias Entolomataceae, Marasmiaceae, Physalacriaceae, Pluteaceae, Strophariaceae e Tricholomataceae. As coletas foram realizadas na área de borda e interior da mata, utilizando a metodologia usual para estudos de fungos Agaricales, em 4 (quatro) expedições de campo, no período de dezembro 2003 a dezembro de 2004. São apresentadas descrições, comentários e ilustrações das espécies encontradas na área de estudo. Palavras-chave: Basidiomycota. Micogeografia. Taxonomia. ENTOLOMATACEAE, PHYSALACRIACEAE, PLUTEACEAE, STROPHARIACEAE E TRICHOLOMATACEAE DA RESERVA BIOLÓGICA DO TINGUÁ. ABSTRACT The Agaricales species survey was carried through in patches of Atlantic Forest in Tinguá Biological Reserve, located at New Iguaçu, Rio de Janeiro state, Brazil. Were found 13(thirteen) species occurrence, distributed in Entolomataceae, Marasmiaceae, Physalacriaceae, Pluteaceae, Strophariaceae e Tricholomataceae. The collections had been carried in the edge and inside the bush areas, with help of the usual methods for mushroom studies, at 4 (four) field expedition in the period of December 2003 to December 2004. Descriptions, comments and illustrations of the species found in the studied areas are presented.

Full text

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 83
FUNGOS DA RESERVA BIOLÓGICA DO TINGUÁ, RIO DE JANEIRO,
BRASIL: ESPÉCIES DAS FAMÍLIAS ENTOLOMATACEAE,
PHYSALACRIACEAE, PLUTEACEAE, STROPHARIACEAE E
TRICHOLOMATACEAE
Margéli Pereira de Albuquerque1
Aníbal Alves de Carvalho Júnior2
Antonio Batista Pereira3
Jair Putzke4
RESUMO
O inventário de fungos da ordem Agaricales (Basidiomycota, Basidiomycetes),
realizado em trechos de Mata Atlântica da Reserva Biológica do Tinguá, revelou a
ocorrência de 13 espécies distribuídas entre as famílias Entolomataceae, Marasmiaceae,
Physalacriaceae, Pluteaceae, Strophariaceae e Tricholomataceae. As coletas foram
realizadas na área de borda e interior da mata, utilizando a metodologia usual para
estudos de fungos Agaricales, em 4 (quatro) expedições de campo, no período de
dezembro 2003 a dezembro de 2004. São apresentadas descrições, comentários e
ilustrações das espécies encontradas na área de estudo.
Palavras-chave: Basidiomycota. Micogeografia. Taxonomia.
ENTOLOMATACEAE, PHYSALACRIACEAE, PLUTEACEAE,
STROPHARIACEAE E TRICHOLOMATACEAE DA RESERVA BIOLÓGICA
DO TINGUÁ.
ABSTRACT
The Agaricales species survey was carried through in patches of Atlantic Forest
in Tinguá Biological Reserve, located at New Iguaçu, Rio de Janeiro state, Brazil. Were
found 13(thirteen) species occurrence, distributed in Entolomataceae, Marasmiaceae,
Physalacriaceae, Pluteaceae, Strophariaceae e Tricholomataceae. The collections had
been carried in the edge and inside the bush areas, with help of the usual methods for
mushroom studies, at 4 (four) field expedition in the period of December 2003 to
December 2004. Descriptions, comments and illustrations of the species found in the
studied areas are presented.
Keywords: Basidiomycota. Mycogeography. Taxonomy.
INTRODUÇÃO
Agaricales é uma ordem composta em sua maioria por fungos conhecidos
vulgarmente como cogumelos. Estes fungos possuem uma história antiga como
elementos de importância alimentar e propósitos medicinais (Wasser et al. 2002). Seu
1Laboratório Experimental de Micologia, Universidade Federal do Pampa, São Gabriel, RS, Brasil.
2Instituto de Pesquisas Jardim Botânico do Rio de Janeiro, Jardim Botânico. Rua Pacheco Leão 915, sala
203, Rio de Janeiro, RJ. CEP 22460-030.
3Universidade Federal do Pampa - UNIPAMPA, Campus de São Gabriel, Av. Antônio Trilha, 1847, Rio
Grande do Sul, Brasil, CEP 97300-000.
4Universidade de Santa Cruz do Sul, Santa Cruz, RS, Brasil.

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uso em processos de descontaminação ambiental (Matheus & Okino 1998), bem como a
presença de espécies de Agaricales relacionadas com patologias alérgicas em humanos
(Gonzalo et al. 1997) ressaltam a importância destes. Segundo Vellinga (2004), existem
poucos estudos sobre fungos Agaricales em regiões tropicais. No Brasil cerca de 1010
espécies são conhecidas e os representantes desta ordem são encontrados em todos os
continentes inclusive o antártico (Putzke 1994). O presente trabalho faz parte do
levantamento da micobiota da Reserva Biológica do Tinguá, situada na baixada
fluminense no Estado do Rio de Janeiro, região Sudeste do Brasil.
Durante o presente estudo verificou-se que as informações sobre espécies de
Agaricales no Rio de Janeiro são escassas, por ordem cronológica pode-se mencionar os
seguintes trabalho: a micobiota de Itatiaia fornecida por Hasselman (1937), Jezek,
Albuquerque et al 2010. Existem também registros de coletas pontuais.
MATERIAL E MÉTODOS
A Reserva Biológica do Tinguá -REBIO Tinguá (22º28’-22º39’S e 43º13’-
43º34’W), localiza-se no estado do Rio de Janeiro no 3º distrito de Nova Iguaçú e
abrange os Municípios de Nova Iguaçú, Miguel Pereira, Petrópolis e Duque de Caxias
(Saracura 1996), esta unidade de conservação está no limite norte da baixada
Fluminense, distante cerca de 70km da cidade do Rio de Janeiro. A Reserva abriga uma
grande variação de tipos vegetacionais ocorrentes no domínio Atlântico,
compreendendo áreas com altitudes que variam de próximas ao nível do mar até cerca
de 1600 m. Em termos fisionômicos a Reserva abriga uma grande variação de tipos
vegetacionais ocorrentes no domínio Atlântico, sendo o maior percentual de cobertura a
Floresta Montana e Submontana. A área é irrigada por inúmeros cursos d’água. O clima
é quente e úmido com estação seca pouco definida nos meses de junho e agosto.
As coletas foram realizadas no período de dezembro de 2003 a dezembro de 2004
seguindo o método usual para coleta e identificação de Agaricales (Largent et al. 1986;
Pereira & Putzke 1990). O material coletado encontra-se depositado no herbário do
Instituto de Pesquisas Jardim Botânico do Rio de Janeiro (RB). Para o estudo das
estruturas microscópicas foram confeccionadas lâminas semi-permanentes. Os cortes
foram realizados com lâmina inoxidável a mão livre, sob microscópio estereoscópico,
em seções transversais às lamelas, para observação de estruturas do himênio, trama e
camada cortical. Os caracteres observados foram ilustrados e fotografados a fim de
comparar com chaves de identificação e descrições presentes na literatura.
RESULTADOS E DISCUSSÃO
Família Strophariaceae Singer & A.H. Sm., Mycologia 38: 503 (1946)
1. Gymnopilus flavipunctatus (Speg.) Singer, Lilloa 23: 222. 1950. Figura 1.
Píleo 2,2 cm, carnoso, campanulado-aplanado, irregular, de coloração marrom dourado,
superfície recoberta por fibrilas ocre escuro, de disposição irregular. Lamelas
decurrentes, de coloração ocre escuro, lamélulas presentes com 3 tamanhos. Estipe 2,4 x
0,4 cm, central, cilíndrico, curvo, de consistência fibrosa, de coloração alaranjada,
superfície glabra a levemente esquamulosa. Hábito cespitoso. Esporos 7,7- 9,5 x 4,8-5,3
µm, méleos, elipsóides, verrucosos. Basídios 20-22 x 3,8-4 µm, hialinos, clavados a

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claviformes, 2 esterigmas. Basidíolos cilíndricos-clavados. Queilocistídos e
pleurocistídios não observados. Camada cortical 13-120 x 12-25 µm, formada por uma
himenioderme com alguns elementos esféricos.
Hábitat: Crescendo sobre tronco na borda da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Deserto. 22º 34’ 08.7”S – 43º 28’ 05.6”W Alt. 740m, 14/XII/2004,
Albuquerque, Carvalho-Júnior. 1-IV (RB417239).
Distribuição geográfica: América do Sul: Brasil (Pegler 1997, Singer 1950).
Comentário: O material examinado concorda com o material estudado por Pegler
(1997). Comparado com as espécies do gênero Gymnopilus desprovidas de anel, o
material do presente estudo se enquadra com G. flavipunctatus, principalmente pelas
dimensões e coloração do basidioma. Gymnopilus marasmioides (Berk.) Singer se
aproxima de G. flavipunctatus, porém possui estipe alongado e esporos menores que
esta última espécie.
Família Entolomataceae Kotl. & Pouzar, Ceská Mykol. 26: 218 (1972)
2. Entoloma lividoalbum (Kühner & Romagn.) Moser, Kleine Kryptogamanflora, Bd II
b/2, ed. 4 (Stuttgart): 196 1978.
Figura 2.
Píleo 8 cm, creme, aplanado, superfície lisa, fibroso, higrofano, glabro, centro
ligeiramente umbonado. Lamelas, aderidas, subdistantes, creme, com lamélulas. Estipe
10 x 8 µm, cilíndrico, reto, rígido, fistuloso, branco, fibroso, superfície recoberta por
fibrilas facilmente destacáveis em longas tiras finas, tornando-se mais espesso em
direção a base, base bulbosa densamente fibrilosa. Anel ausente. Fíbulas não
observadas. Hábito solitário. Esporos 8,8–11,6 x 6,6–8,4 µm, hialinos a levemente
rosados, angulosos, isodiamétricos com 5 faces em vista lateral. Basídios 38–44 x 14,7–
15,8 µm, clavados, hialinos, com 4 esterigmas. Pleurocistídios não observados.
Queilocistídios, cilíndricos, raros. Camada cortical formada por hifas prostradas,
cilíndricas medindo 12-39 µm de diâmetro com alguns elementos eretos, hialinos ou
com pigmento marrom.
Habitat: Crescendo em solo no interior da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Ouro. 22º 34’ 08.9”S – 43º 28’ 05.0”W Alt. 750m, 8/XII/2004, Albuquerque
et al. 29-IV (RB415680).
Distribuição geográfica: América do Sul: Brasil (Albuquerque et al. 2007). Europa:
França, Suíça (Breitenbach & Kränzlin 1995).
Comentários: A espécie apresenta píleo higrófano que aliado as demais características
como tamanho dos esporos e forma da camada cortical permitem a identificação desta
espécie. Entoloma lividoalbum pode ser confundida com Entoloma clypeatum (Fr. ex
L.) Quél. Segundo Breitenbach & Kränzlin (1995), coletas de E. lividoalbum realizadas
na Suíça já foram consideradas como formas de E. clypeatum. A descrição de Kühner &
Romagnesi (1954), demonstra que tratam-se de duas espécies distintas. E. clypeatum se
diferencia, entre outras coisas, pela sazonalidade e maior dimensão dos esporos.
Importância: A espécie é considerada tóxica, provocando uma série de problemas de
saúde (Breitenbach & Kränzlin, 1995).
Família Physalacriaceae Corner, Beih. Nova Hedwigia 33: 10 (1970)
3. Cyptotrama asprata (Berk.) Redhead & Ginns, Can. J. Bot. 58(6): 731 1980.

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Figura 3.
Píleo 3-3,6 cm, carnoso, convexo, campanulado-aplanado, escamas flocosas,
aculeadas, fortemente colorido, amarelo-vivo com centro alaranjado, margem involuta a
revoluta. Lamelas adnexas, brancas, ventricosas-lanceoladas, lamélulas de 2 tamanhos,
distantes entre si. Estipe 2,0-2,2 x 4-4,1 µm, cilíndrico, central, superfície concolor ao
píleo, recoberto por escamas flocosas-aculeadas, densas na região da base, base
bulbilosa. Hábito gregário. Esporos 6,0-9,0 x 5-7 µm, hialinos, limoniformes, parede
fina, lisos, inamilóides em reagente de Melzer. Basídios 22-36 x 6-7 µm, hialinos,
cilíndrico-clavados, com 4 esterigmas, esterigmas longos. Pleurocistídios 15-24 x 8,5-
8,9 µm, hialinos, clavados, evidentes, escassos. Queilocistídios 50-55 x 9-10 µm,
hialinos claviformes. Camada cortical composta por hifas eretas, clavadas, septadas,
com pigmento amarelo, formando uma tricoderme. Fíbulas presentes.
Habitat: Crescendo sobre madeira no interior da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada Ouro. 22º 34’ 08.9”S – 43º 28’ 05.8” W, 06/XII/2004, Carvalho-Júnior et al.
18-IV (RB417253).
Distribuição geográfica: África: Quênia, África do Sul (Pegler 1977). Ásia: Sri Lanka
(Pegler 1986). América Central: Cuba (Pegler 1983). América do Norte: Canadá
(Redhead & Ginns 1980). América do Sul: Brasil (Pereira & Putzke 1990), Argentina
(Wrigth & Albertó 2002). Caribe: Martinica, Guadalupe, Dominica (Pegler 1983).
Comentário: Segundo Pegler (1977) e Wright & Albertó (2002) esta espécie é
facilmente reconhecível pela sua coloração amarela e superfície do píleo coberta por
espinhos. Pegler (1977), à considera uma espécie comum de distribuição pantropical.
Importância: A espécie é considerada não comestível, decompondo madeira morta, sem
especificidade (Guzmán, 1979).
4. Oudemansiella canarii (Jungh.) Höhn., (1909), Sitz. Ber. Akad. Wiss. Wien. 118:
276. 1909. Figura 4.
Píleo 4,5-9,8 cm, carnoso, higrófano, convexo- aplanado, de coloração branca a
bege, as vezes hialinos, imutável ao toque, superfície recoberta por escamas glutinosas,
levemente aculeadas, marrons, evanescentes, margem involuta. Lamelas adnatas a sub-
decurrentes, brancas, lamélulas de 3 tamanhos, imutável ao toque. Estipe 4-5,4 cm,
cilíndrico, branco, fibroso, escamoso, base engrossada. Hábito gregário, cespitoso ou
solitário. Esporos 11-23 µm, hialinos, globosos, com hilo proeminente, inamilóides em
reagente de Melzer. Basídios 19-28 x 6,8–8,8 µm, hialinos, clavados, gutados, 4-
esterigmas, esterigmas largos 3,6 – 4,4 x 1,3 x 2,0 µm. Pleurocistídios 30-63 x 9,1–
13,3µm hialinos, lageniformes. Queilocistídios não visualizados. Camada cortical do
píleo 3,5- 6,6 µm, formada por hifas filamentosas, hialinas. Fíbulas presentes.
Hábitat: Crescem preferencialmente sobre árvores recém tombadas, na borda da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Deserto. 22º 34’ 08.7”S – 43º 28’ 05.6”W Alt. 740m, 14/X/2004,
Albuquerque et al. 1.II (RB417240), 2.II (RB418443), 62.I (RB418372), 20.III
(RB418440); 08/XII/2004, 32.IV (RB418371), 14.IV (RB418441), 03 IV (RB418442).
Distribuição geográfica: África: Kenia, Tanzânia, Zaire (Pegler 1977). América do Sul:
Cuba (Pegler 1983), Brasil (Bononi et al. 1981, Guerreiro & Homrich 1983, Pereira &
Putzke 1990). Ásia: Siri Lanka (Pegler 1986).
Comentário: Espécie de fácil identificação devido às dimensões do basidioma e forma

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globosa dos esporos.
Importância: Segundo Wright e Albertó (2002), a espécie é comestível, porém Gúzmam
(1979) refere que têm certas dúvidas em relação a ingestão dessa espécie. Do ponto de
vista ecológico tem importante papel na decomposição de madeira, sendo
frequentemente observada em ramos e árvores caídas. Em campo é frequentemente
consumida por insetos. Ocorrem em madeiras duras e na REBIO-Tinguá ocorrem,
preferencialmente, em clareiras sobre árvores recém tombadas. Podem ocorrer
basidiomas cespitosos ou solitários. Trata-se de uma espécie interessante do ponto de
vista ecológico sendo a única do gênero frequentemente observada em ramos e árvores
caídas.
Família Pluteaceae Kotl. & Pouzar, Ceská Mykol. 26: 218 (1972)
5. Volvariella volvacea (Bull.) Singer, Lilloa 22: 401. 1951.
Figura 5.
Píleo 6 cm de diâmetro, aplanado-convexo, membranoso-fibroso, sub-umbonado,
com centro depresso, região do umbo e média do píleo muito escura, superfície do píleo
recoberta por fibrilas de coloração cinza escuro com reflexo vináceo, margem estriada.
Lamelas livres, remotas, brancas a rosada-
bpálidas, lamélulas de diferentes tamanhos, não mudando de cor ao toque. Estipe 9 x 1
cm, cilíndrico, liso a levemente fibriloso, ápice rosado, porção mediana cinza-vinácea,
tornando-se rosado e mais largo em direção a região basal. Volva livre, membranosa,
branca acinzentada. Hábito solitário. Basidiósporos 6,1-9,7 x 3,9-4,9 µm, hialinos,
ovóides, liso, com apêndice hilar excêntrico, gutado, inamilóides em reagente de
Melzer. Basídio 31-35,3-8,0 µm, clavados, com 4 esterigmas longos. Pleurocistídios
clavados 27- 34,8 x 9,2-12 µm. Queilocistídios 19,2-22,4 x 4,7-5,9 µm, hialinos,
clavado com longo apêndice apical, de difícil observação não hidratando com KOH 5%.
Camada cortical formada por uma epicutis de hifas paralelas com elementos inflados
19,2-22,4 x 4,7-5,9 µm.
Habitat: Em solo no interior de mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Ouro. 22º 34’ 08.5”S – 43º 28’ 05.9”W, 8/XII/2004, Carvalho-Júnior et al.
27-IV, (RB415683).
Distribuição geográfica: África: Quênia, Tanzânia, Uganda (Pegler 1977). América do
Sul: Brasil (Rick 1961). Ásia: China (Pegler 1986).
Comentários: Segundo Heinemann (1975), para a determinação desta espécie o habitat é
muito importante. V. volvacea é próxima de V. bakeri (Murr.) Schaffer., sendo
diferenciada somente pelo tipo de substrato de ocorrência. O material concorda com a
descrição apresentada por Pegler (1977). Uma variação no tamanho dos cistídios foi
observada, contudo, no estudo de laboratório foram observados poucos cistídios o que
pode estar relacionado ao avançado estágio de maturação do basidioma quando
coletado. Na descrição desta espécie em Pegler (1983), as medidas de cistídios variam
em relação à descrição presente em Pegler (1977) em até 25 µm, o que demonstra que o
caráter tamanho dos cistídios não é decisivo para determinação desta espécie. Pegler
(1983) não descreve pleurocistídios na sua amostra de V. volvaceae, porém estes são
representados na ilustração da espécie.
É uma espécie cultivada em ampla escala comercial em muitas regiões tropicais e
subtropicais (Pegler 1977; Ding et al. 2001), estando entre as cinco espécies mais
cultivadas em termos de produção mundial de cogumelos. Segundo Ding et al. (2001),

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comparada as demais espécies com ampla aceitação comercial (p. ex. Agaricus
bisporus, Lentinula edodes e Pleurotus spp) V. volvacea se desenvolve pobremente em
substratos com alto conteúdo de lignina tendo baixa produtividade, além de suas
frutificações serem de tamanho inferior a maioria das espécies comercialmente
cultivadas. Akinyele & Akinyosole (2005), estudaram o uso potencial desta espécie na
degradação de rejeitos agroindustriais, propondo o uso dos basidiomas cultivados neste
tipo de substrato na alimentação de animais de criação.
CHAVE DE IDENTIFICAÇÃO PARA AS ESPÉCIES DE STROPHAREACEAE DA
RESERVA BIOLÓGICA DO TÍNGUÁ.
1.1. Basidiomas com píleo não campanulado, esporada lilás escura,,,,,,,,,,H. fasciculare
1.2. Basidiomas com píleo campanulado, esporada marrom ferrugem.......P. conissans
Família Strophariaceae Singer & A.H. Sm., Mycologia 38: 503 (1946)
6. Hypholoma fasciculare (Huds. ex Fr.) Kummer, Führ. Pilzk.: 72. 1871.
Figura 6.
Píleo 5-6 cm, carnoso, convexo, aplanado, liso, de coloração bege amarelado,
margem crenulada. Lamelas adnexas, de coloração amarela, manchadas de marrom
púrpura na maturidade, lamélulas presentes. Estipe 4-5 x 0,4-0,5cm, central, curvo,
cilíndrico, fibroso, amarelo claro. Anel ausente. Hábito cespitoso. Esporos (3,8) 5,3-9.2
x (3,3) 3,5-4,7 (7,5) µm, hialinos a fracamente amarelados, elípticos a ovais, parede
grossa, lisa, poro germinativo distinto, hilo central a excêntrico, poligutados, inamilóide
em reagente de Melzer. Basídios 16,8-23 x 5,2-6,3µm, hialinos, clavados, com 2 a 4
esterigmas. Pleurocistídios 22,6-30 x 8,6-12µm, capitados. Queilocistídios 23-32 x 7,6-
10,3µm, méleos, lageniformes, fusóides, versiformes. Camada cortical formando uma
cútis composta por hifas prostradas. Fíbulas presentes.
Habitat: Crescendo sobre madeira na borda da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Colomi. 22º 35’ 03.4”S – 43º 24’ 47.4”W Alt. 97m, 14/X/2004,
Albuquerque et al 47-III, (RB417272).
Distribuição: Africa: Tanzania (Pegler 1977). América Central: México (Munguia et al.
2003). América do Sul: Argentina (Wrigth & Albertó 2002), Brasil (Rick 1919).
Europa: Suíça (Breitenbach & Kränzlin 1995).
Comentário: A amostra concorda com a descrição de H. fasciculare presente em Pegler
(1977), excetuando-se o tipo de inserção das lamelas e a ausência de pleurocistídios.
Pegler (1977) descreve as lamelas como adnatas em H. fasciculare (é possível que na
maturidade H. fasciculare apresente lamelas adnexas). Pegler (1977), não observou
pleurocistídios no material africano. Breitenbach & Kränzlin (1995) estudando material
europeu encontram pleurocistídios lageniformes medindo 28-45 x 7-11 µm, estas
medidas estão próximas as encontradas no material de Tinguá. As demais características
desta espécies são bastante similares as presentes no material examinado, podendo ter
destaque: forma aplanada e coloração do píleo expressa em uma gama de tons
amarelados como amarelo sulfúrico; laranja ocráceo; marrom alaranjado; tamanho e
forma do estípe, forma e tamanho dos esporos e poro germinativo. Em nosso material a
presença de queilocistídios do tipo crisocistídios de dimensões próximas de H.
fasciculare aliadas a presença de camada cortical formada por hifas prostradas e
tamanho dos esporos permitem a identificação deste material. A amostra também é
similar a H. capnoides e H. subviride. Na descrição H. capnoides apresentada por

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Breitenbach & Kränzlin (1995) é possível distinguir H. capnoides de H. fasciculare
devido ao tamanho do píleo, menor em H. capnoides e cor do ápice do estipe, marrom
avermelhado na última. H. subviride diferencia-se pelo tamanho reduzido do píleo
medindo 0,3-2,5 cm.
Importância: Segundo Breitenbach & Kränzlin (1995), esta espécie é considerada
perigosa, provocando intoxicações sérias se ingerida. Wrigth & Albertó (2002)
reconhecem também o perigo de ingestão desta espécie e relatam casos de intoxicação
fatais em algum paises da europa.
7. Pholiota conissans (Fr.) Kuyp. & Tjall. Persoonia 13 (1): 81. 1986.
Figura 7.
Píleo 2-2,2cm, carnoso-fibroso, convexo, campanulado, alguns com ápice
mamilado, glabro, marrom claro, com manchas esbranquiçadas na região central,
margem estriada. Lamelas adnata-decurrentes, de coloração creme, ficando marrom
ferrugem após desidratado. Estipe 3,9-6,6 x 2,1–2,73µm, longo, cilíndrico, fistuloso,
fibroso, imutável ao toque. Hábito cespitoso. Esporos 5,3–6,7 x 3,5–n4,8µm,
estramíneos entre poucos hialinos, elipsóides, alguns ovais, parede grossa, com poro
germinativo. Basídios 19-27 x 7-8µm, hialinos, cilíndricos-clavados, com 4 esterigmas.
Trama himenoforal regular, mediostrato largo. Pleurocistídios 18,9–21,4 x 5,4 x 5,7µm,
hialinos, hifóides, lageniformes. Queilocistídios não observados. Camada cortical
formada por hifas curtas, cilíndricas, sub-globosas, hialinas, prostradas. Fíbulas não
observadas.
Habitat: Crescendo em madeira em decomposição em interior de mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada Velha, 2/VII/2004, Albuquerque et al. 16–II (RB417247).
Distribuição: América do Sul: Brasil (Albuquerque et al 2007). Europa: Irlanda, Suíça
(Breitenbach & Kränzlin 1995).
Comentário: O hábito cespitoso, forma e coloração do basidioma, esporos elípticos de
parede grossa e a presença de poro germinativo, permitem identificar a presente espécie.
No material coletado na REBIO-Tinguá os pleurocistídios são menores que os descritos
no material estudado por Breitenbach & Kränzlin (1995) na Europa e os queilocistidios
não foram observados. Contudo as demais características microscópicas associadas aos
caracteres macroscópicos permitem determinar a presente amostra como P. conissans.
Segundo os autores citados acima, esta espécie possui afinidades macroscópias e
ecológicas com P. alnicola (Fr.) Sing., sendo diferenciada pela ausência de
crisocistidios e esporos com menores dimensões que P. conissans.
Importância: Segundo Breitenbach & Kränzlin (1995) esta espécie não possui sabor
agradável, portanto não recomendam seu consumo.
Família Tricholomataceae R. Heim ex Pouzar, Ceská Mykol. 37: 175 (1983)
8. Clitocybe hydrophora Pegler, Persoonia 4: 103. 1966.
Figura 8.
Píleo 4 cm, bege acinzentado, convexo, membranoso, higrofano, umbilicado, liso,
margem finamente estriada. Lamelas brancas, decurrentes, lamélulas presentes. Estipe 2
x 0,2 cm cilíndrico, bege, membranoso. Anel ausente. Hábito solitário. Esporos 5,4-6,6
x 3,4-4,4 µm, hialinos, elipsóides-globosos, inamilóides em reagente de Melzer.
Basídios 25-28,8 x 5,8-6,4 µm, hialinos, clavados, com 4 esterigmas 1,9-2,4 µm. Trama

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 90
himenoforal subregular. Queilocistídios 14-40 x µm, ventricosos, ampuláceos. Camada
cortical composta por hifas hialinas, finas, prostradas, ramificadas, com píleocistídios
medindo 16-19 x 4-8µm. Fíbulas presentes na camada cortical.
Habitat: Crescendo sobre madeira em decomposição, no interior da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada Ouro. 22º 34’ 08.5”S – 43º 28’ 05.9” W; 08/XII/2004, Albuquerque et al. 26-IV
(RB417256).
Distribuição geográfica: América do Sul: Brasil (Albuquerque et al 2007). África:
Tanzânia, Uganda (Pegler 1977).
Comentário: O material examinado quando comparado com espécies de ocorrência
tropical (Pegler 1977) é facilmente identificado como C. hydrophora, pelo tamanho e
forma dos esporos hialinos, presença de fíbulas, presença de píleocistídios e píleo
translúcido com estrias na margem. O material examinado neste trabalho apresenta
tamanhos de queilocistídios menores que os descritos por Pegler (1977), porém as
demais características concordam fortemente com a descrição apresentada por este
autor. Pegler (1977) considera C. hydrophora como uma espécie anômala de Clitocybe
devido ao hábito lignícola. Esse fato salienta a posição da amostra da REBIO-Tinguá,
permitindo identifica-la como C. hydrophora.
Familia Marasmiaceae Roze ex Kühner, Bull. mens. Soc. linn. Lyon 49: 76 (1980)
Chave de identificação para o gênero Marasmiellus da Reserva Biológica do Tínguá.
9. Marasmiellus ramealis (Bull.) Singer, Pap. Mich. Acad. Sci. 32: 130. 1948.
Figura 9.
Píleo 1,6-3,0 cm, branco-creme, de consistência membranosa, fino, aplanado,
glabro, radialmente rugoso-sulcado. Lamelas adnexas, brancas, distantes entre si,
lamélulas presentes. Estipe 3,4 mm, central, cilíndrico, fibroso, de coloração ocre, mais
claro no ápice. Hábito gregário. Esporos hialinos, cilíndricos, 3,1-6,4x 2,1-3,1 µm,
inamilóides em reagente de Melzer. Basídios 11,1-24 x 6,2–7,1 µm, hialinos,
claviformes, com 4 esterigmas longos 2,5-3,3 x 1,0-1,5µm. Pleurocistídios ausentes.
Queilocistídios não observados. Camada cortical formada por hifas prostradas do tipo
Ramealis, finas. Fíbulas não observadas.
Habitat: Crescendo em madeira em decomposição na borda da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Deserto. 22º 34’ 08.7”S – 43º 28’ 05.6”W Alt. 740m, 6/XII/2004,
Albuquerque et al. 20-IV (RB417254).
Distribuição geográfica: América do Sul: Brasil (Albuquerque et al 2007). Caribe:
Dominica, Martinica (Pegler 1983).
Comentário: A amostra se enquadra na seção Ramealis do gênero Marasmiellus, devido
à presença de hifas diverticuladas características na camada cortical do píleo. Na
amostra coletada na REBIO-Tinguá os esporos são menores e os queilocistídios não
foram observados. Pegler (1983), comenta sobre sua amostra de M. ramealis do Caribe
ser próxima a var. subtropicalis (Singer) descrita para a Argentina, divergindo apenas no
tamanho dos esporos, que são relativamente mais alongados. Não foi possível comparar
o material estudado com a descrição de M. ramealis var. subtropicalis. As demais
características microscópicas e macroscópicas permitem identificar o espécime estudado
no presente trabalho como M. ramealis.

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 91
10. Marasmiellus volvatus Singer Fieldiana, Bot., N.S. 21: 37 1989.
Figura 10.
Píleo 0,3-0,7 cm, branco, membranoso, campanulado, superfície glabra, sulcado.
Lamelas adnatas, distantes, brancas, com lamélulas presentes, não mudando de cor ao
toque. Estipe 0,4-0,9 x 0,1 cm, cilíndrico, curvo, branco, membranoso, base engrossada
revestida por uma volva membranácea branca, intimamente unida á base do estipe.
Hábito gregário. Esporos 4,0-6,8 x 2-3,1 µm, hialinos, elipsóides, inamilóides em
reagente de Melzer. Basídios 19-36 x 6,5 x 8,9 µm, clavados, hialinos, com 2
esterigmas, curtos. Basidíolos 26-39 x 4,5-10 µm, hialinos, claviformes-hifóides.
Cistídios ausentes. Camada cortical formada por hifas gelatinizadas 3,0-5,6 µm. Fíbulas
não visualizadas.
Habitat: Crescendo sobre madeira em decomposição tanto no interior como na borda da
mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Colomi. 22º 34’ 13.0” S – 43º 23’ 11.8”W Alt. 80m, 06/XII/2004,
Albuquerque et al 12-XII (RB415684); Estrada do Colomi. 22º 34’ 13.0” S – 43º 23’
11.8”W Alt. 80m, 06/XII/2004, M. P. Albuquerque et al 13-XII (RB417246).
Distribuição: América do Sul: Brasil (Singer 1989).
Comentário: A amostra proveniente da REBIO-Tinguá apresenta diferença em relação
ao tamanho dos esporos quando comparados com a descrição original, sendo menores
no espécime de Tinguá. Foram encontrados poucos esporos na presente amostra e os
esporos encontrados ainda permaneciam unidos aos esterigmas. Provavelmente não
estavam totalmente desenvolvidos o que poderia implicar em um tamanho reduzido. Na
descrição original de Singer (1989) também é descrito um material com poucos esporos.
A macroscopia, presença de volva e características como tamanho dos basídios e
presença basidíolos permite identificar esta espécie do gênero Marasmiellus.
Importância: desconhecida.
CHAVE PARA AS ESPÉCIES DO GÊNERO MARASMIUS DA RESERVA
BIOLÓGICA DO TÍNGUÁ.
1.1. Equinidios da camada cortical do tipo Rotalis .......................... M. rotalis.
1.2. Equinidios da camada cortical do tipo Siccus..........................................2.
2.1. Píleo de coloração púrpura .......................................M. haematocephalus.
2.2. Píleo de coloração marrom-ferrugínea ...............................M. ferrugineus.
11. Marasmius ferrugineus (Berk.) Berk. & M.A. Curtis, Journ. Linn. Soc. Bot. 10:
297. 1869. Figura 11.
Píleo 0,7-2 cm, membranoso, convexo, cônico-campanulado, sulcado, glabro, de
coloração ferrugínea, mais escura no centro do píleo. Lamelas livres, não colariadas, 18
lamelas completas, de coloração bege, distantes entre si, rígidas, lamélulas ausentes,
imutável ao toque. Estipe 3-5,5 x 0,3-0,4 mm, grácil, ápice bege tornando-se ferrugíneo
em direção a base, micélio basal bege. Basidiósporos 14-15,2 x 2,9-3,8 µm, hialinos,
oblongos, parede fina. Trama himenoforal regular. Basídios não observados.
Pleurocistídios 29-56 x 7-17µm, fusóides, do tipo gleocistídios. Queilocistídios 7- 10
µm, idênticos aos elementos da camada cortical. Camada cortical com equinídios do
tipo Siccus, com sétulas pigmentadas de marrom. Fíbulas presentes.

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 92
Habitat: Crescendo sobre tronco na borda da mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada do Barrelão; 8/XII/2004, Albuquerque et al. 34-IV (RB417261).
Distribuição: África: Sem determinação de país (Pegler 1977). América do Sul: Bolívia,
Brasil (Singer 1965). Caribe: Martinica, Guadalupe, Trindade (Pegler 1983).
Comentários: Segundo Pegler (1983), a espécie é de ocorrência comum entre as
encontradas na América tropical. Característica pela coloração marrom ferrugem do
píleo, esporos alongados e pelos numerosos gleocistídios. As amostras brasileiras já
foram consideradas como M. ferrugineus var. gardneri que Singer (1958) havia
considerado M. gardneri, coletadas por Singer (1976) em Angra dos Reis - Rio de
Janeiro e em Minas Gerais por outros autores.
12. Marasmius haematocephalus Singer, Sydowia 18: 300. 1965.
Figura 12.
Píleo 1-1,2 cm, de coloração púrpura, campanulado, membranoso, sulcado,
superfície lisa, não mudando de cor ao toque, borda lisa. Lamelas adnexas, púrpuras,
com 9 lamelas completas, 1 lamélula, margem lisa, imutável. Estipe medindo 3 cm,
longo, fino, cilíndrico, concolor a lamela no terço superior, negro até a base,
membranoso. Hábito gregário. Esporos 14-20 x 3-3,5 µm, fusóides, de parede fina,
hialinos, inamilóides. Trama himenoforal regular. Basídios 16 x 9,8 µm, hialinos,
clavados, com 4 esterigmas curtos. Pleurocistídios hialinos 11-26 x 3,2 x 9,5 µm,
lageniformes. Camada cortical formada por equinídios do tipo Siccus, com 10-20 x 8,7-
10,5 µm, pigmento marrom nas sétulas. Fíbulas presentes.
Habitat: Crescendo sobre galhos no interior da mata.
Material examinado BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada Velha. 22º 33’ 31.1”S – 43º 28’ 0.6.2”W Alt. 97m, 8/XII/2004, Albuquerque
40-IV (RB417268).
Distribuição geográfica: África: Quênia, Tanzânia, Uganda (Pegler 1977). Ásia: Sri
Lanka (Pegler 1986). América Central: Panamá. (Pegler 1983). América do Norte: EUA
(Pegler 1983). América do Sul: Argentina, Bolívia, Brasil (Singer 1965). Caribe:
Dominica, Martinica, Trindade (Pegler 1983).
Comentários: A espécie á facilmente identificada pela coloração púrpura do píleo,
ausência de colário e equinídios do tipo Siccus.
13. Marasmius rotalis Berk. & Br., Journ. Linn. Soc., Bot. 14: 40. 1875.
Figura 13.
Píleo 0,3-0,9 cm, membranoso, convexo, campanulado, marrom a ocráceo, opaco,
umbilicado de coloração mais clara no centro, sulcado, superfície glabra. Lamelas,
livres, colariadas, brancas a creme pálidas, rígidas, distantes entre si, com 14-15 lamelas
completas, 2 lamélulas, não mudando de cor ao toque. Estipe 7 x 0,1-0,5 cm, grácil,
superfície glabra, marrom escura a preta. Hábito gregário. Esporos 7,0-9,6 x 3,7-5,4
hialinos, oblongos, lisos, inamilóides em reagente de Melzer. Basídios 18-20 x 7-7,8
µm, hialinos, claviformes, com 4 esterigmas. Pleurocistídios ausentes, hialinos,
ampuláceos. Queilocistídios 15,8-24,7x 3,9-8,0 µm, idênticos aos equinídios da camada

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 93
cortical. Camada cortical 9-15x 6-13 µm, composta por equinídios do tipo Rotalis,
hialinos com apêndices digitiformes marrons. Fibulas presentes.
Habitat: Sobre folha em interior de mata.
Material examinado: BRASIL. RIO DE JANEIRO: Nova Iguaçú, REBIO-Tinguá,
Estrada Ouro. 22º 33’ 31.1”S – 43º 28’ 06.2”W, 8-XII-2004, Albuquerque et al. 30-IV
(RB417259).
Distribuição geográfica: África: Zaire, Quênia e Uganda (Pegler 1977); América
Central: Colômbia (Singer 1976); América do Sul: Brasil (Putzke 2003); Ásia: Ceilão
(Pegler 1986).
Comentário: Segundo Singer (1976), em coletas da Colômbia e Sri Lanka o estipe
apresenta o ápice branco. Esta mesma característica está presente na descrição do
espécime coletado no Rio Grande do Sul por Putzke (2002). A amostra obtida na
REBIO-Tinguá difere neste aspecto, não possuindo ápice branco. Singer (1965), faz
referência a duas amostras coletadas na Argentina, muito próximas de M. rotalis, mas
que diferem em caracteres menores como tamanho dos esporos e tamanho do
basidioma, oferecendo uma descrição de Marasmius aff. rotalis. Essa descrição
concorda com a mostra da REBIO-Tinguá. Em Marasmius aff. rotalis, o estipe não
possui um ápice branco, sendo muito parecido com a espécie coletada em Tinguá,
porém os esporos medem 9,6-4 µm enquanto que na amostra do presente trabalho os
esporos medem 7,0-9,6 x 3,7-5.4, estando mais próximos das medidas sugeridas para M.
rotalis, concordando também com o tamanho do basidioma e com as características
microscópicas.
REFERÊNCIAS
Akinyele, B. J. & Akinyosoye, F. A. 2005. Effect of Volvariella volvacea cultivation on
the chemical composition of agrowastes. African Journal of Biotechnology 4(9): 979-
983.
Albuquerque, M.P., Carvalho-Júnior, A.A., Pereira, A. B. 2007. Novas ocorrências de
Agaricales (Basidiomycota) para o Brasil. Revista Brasileira de Biociências 5, supl. 2:
1143-1145.
Bononi, V.L.R, Autuori, M. & Rocha, M. B. de. 1981. Fungos macroscópicos
depositados no herbário do Instituto de Botânica de São Paulo. Rickia 9: 37-53.
Breitenbach, J. & Kränzlin, F. 1995. Champignons de Suisse. IV. Agaricales. 2ª
partie.Ed. Mykologia, Lucerne, 371p + il.
Ding, S.J., Ge, W. & Buswell, J. A. 2001. Endoglucanase I from the edible straw
mushroom, Volvariella volvacea. Purification, characterization, cloning and expression.
European Journal of Biochemistry 268: 5687–5695.
Gonzalo, M. A., Paredes, M. M., Muñoz, A. F., Tormo, R. & Silva, I. 1997. Dinâmica
de disperción de basidiosporas em la atmosfera de Badajóz. Revista Española de
Alergología e Inmunología Clínica, 12(5): 294-300.

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 94
Guerrero, R. T., Homrich, M. H. 1983. Fungos macroscópicos do Rio Grande do Sul:
guia para identificação. Porto Alegre, Editora da Universidade/UFRGS. 124p.
Guzmán, G. 1979. Hongos Comestibles, venenosos y alucinantes. Limusa, México.
452p.
Hasselmann, C. F. 1937. Contribuição ao estudo da flora mycologica do Itatiaya.
Rodriguésia 2(8): 55-58.
Krempelhuber, A. 1876. Lichenes Brasiliensis, collecti a D.A. Glaziou in provincia
brasiliensi Rio Janeiro. Flora 59:33-38.
Kühner, R. & Romagnesi, H. 1954. Rhodophyllus lividoalbus. Revue Mycologique 19:
6.
Largent, D. l., Johnson, D. & Waitling, R. 1986. How to identify mushrooms to genus
III.: microscopic features. Mad River Press, Eureka. Califórnia. 273p.
Matheus, D. R. & Okino L. K. 1998. Utilização de Basidiomicetos em processos
biotecnológicos. In: Bononi, V. L. R. & Grandi, R. A. P. 1998. Zigomicetos,
basidiomicetos e deuteromicetos: noções básicas de taxonomia e aplicações
biotecnológicas. Instituto de Botânica de São Paulo. S.P. p.107-139.
Munguia, P., Guzmán-Davalos, L. & Rodróguez, O. 2003. Macromycete phenological
approximations in western mexican forest. The Southwesterns Naturalist 48(4): 661-
728.
Nevo, E., Stamets, P. & da Eira, A. F. 2002. Is widely cultived culinary-medicinal
Royal Sun Agaricus. (the Himematsutake mushroom) indeed Agaricus blazei Murril?
International Journal of Medicinal Mushrooms, 4: 267-290.
Pegler, D. N. 1977. A preliminary agaric flora of East Africa. Kew Bulletin
Additional Series VI, 615p.
Pegler, D. N 1983. Agaric flora of Lesser Antilles. Kew Bulletin Additional Series IX,
406p.
Pegler, D. N 1986. Agaric flora of Sri Lanka. Kew Bulletin Additional Series XII:
519p.
Pegler, D. N 1987. Agaricales of Brazil describe by M. J. Berkeley. Kew Bulletin
43(3): 453- 473.
Pegler, D. N 1989. Agaricales of Brazil described by J.P.F.C. Montagne. Kew Bull.
41(1): 161-177.
Pegler, D. N. 1997. The Agarics of São Paulo. An account ot the agaricoid fungi
(Holobasidiomycetes) of São Paulo State, Brazil. Royal Botanic Gardens, United
Kingdon. 68p.

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 95
Pereira, A. B. & Putzke, J. 1990. Famílias e gêneros de fungos Agaricales
(cogumelos) no Rio Grande do Sul. Santa Cruz do Sul, RS, ed. Fisc, 188 p.
Putzke, J. 1994. Lista de fungos Agaricales (Hymenomycetes, Basidiomycotina),
referidos para o Brasil. Caderno de Pesquisas. Série Botânica, 6 (2): 1- 189.
Putzke, J. 2002. Espécies de Tricholomataceae no Rio Grande do Sul. Porto Alegre:
Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Tese de Doutorado. 668p.
Redhead, S. A. & Ginns, J. H. 1980 Cyptotrama asprata (Agaricales) from North
America and notes on the five other species of Cyptotrama sect. Xerulina. Canadian
Journal of Botany 58(6): 731-740.
Rick, J. 1919. Contributio ad Monographiam Agaricacearum Brasiliensium (II).
Brotéria, Série Botanica. 17. 101-111.
Rick, J.1961. Basidiomycetes eubasidii in Rio Grande do Sul - Brasilia. Iheringia 8:
296-450
Saracura, V. F.1996. Reserva biológica do tinguá. Plano de ação emergencial.
Ministério do Meio Ambiente, dos Recursos Hídricos e da Amazônia Legal. IBGE.
114p.
Singer, R. 1950. Type studies on Basidiomycetes IV. Lilloa 23: 147-246.
Singer, R. 1965. Interesting and new Agaricales from Brazil. Atas do Imur 2: 15-59
Singer, R. 1976. Marasmieae (Basidiomycetes-Tricholomataceae). Flora neotropica.
Monograph 17: 347p.
Singer, R. 1986. The Agaricales in modern taxonomy. 4ª ed. Koenigstein, Germany.
Koeltz Scientific Books. 981p. 88pl.
Singer, R. 1989. New taxa and new combinations of Agaricales (Diagnoses Fungorum
Novorum Agaricalium IV). Fieldana (Botany) 21: 1-133.
Vellinga, E. 2004. Ecology and distribution of lepiotaceus fungi (Agaricaceae). A
Review. Nova Hedwigia 78(3-4):237-299.
Wright, J. & Albertó, E. 2002. Hongos. Guia de la region pampeana I. Hongos con
laminillas. L.O.L.A. Buenos Aires, 279p.

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 96
Figura 1. Gymnopilus flavipunctatus (Berk. & Kurt.). A. Hábito. B. Basídio (seta). C.
Esporos. D. Hifas da camada cortical do píleo E. Basidíolos (seta). (Barra A= 1 cm, B,
C e E= 10 µm, D= 20 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 97
Figura 2 Entoloma lividoalbum (Kühner & Romagn.) M.M. Moser A. Hábito. B.
Detalhe da superfície do píleo. C. Hifas infladas da camada cortical. D. Basídios. E.
Esporos. F. Queilocistídios. (Barra A-B=2cm,
C= 20µm, D -F= 10µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 98
Figura 3. Cyptotrama asprata (Berk.) Redhead & Ginns. A-B. Hábito. C. Elementos da
camada cortical (seta). D. Basídios (seta). E. Esporo (seta). F. Queilocistídios (seta).
(Barra A= 2 cm, B= 1 cm ,C= 20 µm, D-F= 10 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 99
Figura 4. Oudemansiella canarii (Jungh) Hoehmel. A. Hábito. B. Detalhe das escamas
da superfície do píleo. C. Esporos globosos. D. Basídio. E. Cistídios. F. Hifas da
camada cortical. (Barra A- B= 2 cm, C-E=10 µm, F= 20 µm)

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 100
Figura 5. Volvariella volvacea (Bull.) Singer. A. Hábito. B. Detalhe da superfície do
píleo. C. Esporos. D. Basídio. E. Elementos da camada cortical. F. Queilocistídios.
(Barra A-B= 2 cm, C, D e F= 10 µm, E= 20 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 101
Figura 6. Hypholoma fasciculare (Huds. ex Fr.) Kummer. A. Hábito. B. Detalhe do
himenóforo. C. Basídio (seta). D. Hifas da camada cortical do píleo. E. Esporos. F.
Pleurocistídios (seta). G. Crisocistídios (seta). (Barra A-B= 1cm, C-G= 10µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 102
Figura 7. Pholiota conissans (Fr.) Kuyp. & Tjall. A. Hábito. B. Elementos da
hipoderme da camada cortical do píleo. C. Basídios. D. Esporos. E. Pleurocistídios
(seta). F. Trama himenoforal regular paralela. (Barra A = 1cm. B= 50µm C- E = 10µm e
F= 20µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 103
Figura 8. Clitocybe hydrophora Pegler. A-B. Hábito. C. Basídios (seta). D.
Queilocistídios (seta). E. Píleocistídios na camada cortical. F. Esporos (seta). (Barra A-
B= 1 cm, C-F= 10 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 104
Figura 9. Marasmiellus ramealis (Bull.) Singer. A. Hábito. B. Detalhe da superfície do
píleo. C. Hifas da camada cortical do píleo. D. Basídios portando esporos (seta). E.
Basídios. F. Esporos (seta). (Barra A- B= 1 cm. C= 20 µm. D-F=10 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 105
Figura 10. Marasmiellus volvatus Singer. A. Hábito vista inferior. B. Habito vista
superior. C. Basidíolos. D. Hifas da camada cortical. E. Basídios. F. Esporo preso ao
basídio (seta). G. Aspecto geral da camada cortical do píleo. (Barra A-B= 1 cm, C, E-F=
10 µm, D e G= 20 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 106
Figura 11. Marasmius ferrugineus (BerkY) Berk & Curtis. A-B. Hábito. C. Esporos,
presos aos esterigmas (seta). D. Cistídios (seta). E. Contexto do himênio. 1. Elementos
do himênio (basidíolos e cistídios), 2. Equinídios do tipo Siccus da camada cortical do
píleo. F. Camada cortical do píleo pigmentada (seta). (Barra A-B= 1 cm, C-D= 10 µm,
E=20 µm, F= 50 µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 107
]
Figura 12. Marasmius haematocephalus Singer. A-B. Hábito. C-D. Equinidios do tipo
Siccus na camada cortical do píleo. E. Basídio. F. Esporo. (Barra A-B= 1 cm, C-F= 10
µm).

Caderno de Pesquisa, Série Biologia, Volume 24, número 3 108
Figura 13. Marasmius rotalis Berk & Br. A. Hábito. B. Detalhe do himenóforo. C.
Elementos da camada cortical do píleo. D. Detalhe dos equinidios do tipo Rotalis (seta).
E. Basídio portando quatro esporos (seta). F. Esporos. G. Massa de queilocistídios
(seta). H. Detalhe dos queilocistídios semelhantes aos elementos da camada cortical
(seta). (Barra A-B=1 cm, C-H= 10 µm).