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Enfermedades en plantas en el estado de Michoacán

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RESUMEN El estado de Michoacán es uno de los principales estados en producción agrícola en México; sin embargo, las enfermedades son el principal factor limitante para obtener altos rendimientos. También se presentan problemas fitopatológicos en los bosques. En la actualidad, no existe una referencia que cite, de manera actualizada, las enfermedades que se presentan en los diferentes cultivos. La compilación de información que existe sobre la presencia de patógenos en los principales cultivos no está actualizada. El número de enfermedades descritas en los cultivos en el estado se ha incrementado en los últimos años, pero la información está dispersa y no organizada para que pueda ser accesible rápidamente. El objetivo de esta revisión fue recopilar la información publicada de enfermedades que se han detectado en los diferentes cultivos en Michoacán la cual puede ser útil tanto para productores como para investigadores. Palabras clave: Patógeno, hospedante, hongo. ABSTRAC Michoacán is one of the main states in Mexico in agriculture production; however, diseases reduce drastically crop yield. There are also phytopathological problems in forests. An actualized list of the crop diseases present in the state is lacking. There is a reference citing crop diseases in Mexico, including Michoacán, from the 1980s. New diseases have been reported in the state in the last years, and there is a need to organize such information. The purpose of this work is to compile the information on published reports on diseases of agricultural importance in Michoacán and make it available for researches and farmers.
Biológicas, Diciembre 2012, 14(2): 75 – 89
Revista de la DES Ciencias Biológico Agropecuarias, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo
Introducción
La producción agrícola en Michoacán se realiza en
aproximadamente 1.2 millones de hectáreas, de las cuales el 31%
cuenta con sistemas de riego y el resto de la producción se obtiene
en aéreas de temporal. El total de las zonas agrícolas representan
cerca del 20% de la supercie del estado, en donde se cultivan
más de 150 especies de plantas. El maíz es el principal cultivo
en cuanto a la supercie destinada a su producción. Mientras
que el aguacate es el cultivo de más alta rentabilidad, ya que
Michoacán es el principal productor de este cultivo en México
y en el mundo. Además del maíz y el aguacate, otros cultivos
que tienen una importancia económica considerable en el estado
son: sorgo, trigo, frijol, caña de azúcar, limón, mango, garbanzo,
plátano, guayaba, ajonjolí y diversas hortalizas. Recientemente
se ha incrementado la supercie destinada a la producción de
cultivos de frutillas como la zarzamora y la frambuesa entre otros.
En cuanto a la producción forestal, se estima que representa el
27% de la supercie del estado (Andrés-Agustín, 2007).
El gran número de cultivos agrícolas en Michoacán
establecidos en las diversas zonas geográcas y climáticas del
estado, presentan diversos retos que en algunos casos impiden
obtener su máximo potencial productivo. La disponibilidad
oportuna de agua para riego o agua de lluvia, es en algunos casos el
principal factor limitante. Otro factor limitante muy importante
son las enfermedades causadas por microorganismos patógenos
de plantas. En Michoacán, algunos ejemplos de enfermedades
que limitan la producción agrícola son la enfermedad tristeza del
aguacatero, el tizón de la papa, la malformación del mango, la
marchitez del chile, cenicillas y virosis en jitomate. Un catálogo
o lista de enfermedades en cultivos agrícolas y forestales en
una región determinada, es una herramienta importante para
especialistas en diversas áreas relacionadas con la agricultura,
porque permite establecer rápidamente la presencia o ausencia
de microorganismos patógenos de plantas de importancia
cuarentenaria en los países receptores de las exportaciones
agrícolas de esa región. Además, permitiría a los asesores agrícolas
y agricultores identicar las zonas geográcas del estado o región,
donde ciertos patógenos de cultivos importantes están presentes
y podrían ser un factor limitante de la producción.
Debido a la importancia económica que representa la
actividad agrícola en Michoacán, el número de investigadores
y publicaciones enfocados a la identicación, epidemiología y
control de microorganismos patógenos que afectan la producción
agrícola en el estado se ha incrementado. El propósito de este
trabajo fue actualizar la información previamente reportada
(Fernandez-Pavia et al., 2008) sobre las enfermedades de plantas
en Michoacán, incluyendo cultivos agrícolas, forestales y malezas.
Los hospedantes se enlistan en orden alfabético, posteriormente
se menciona el patógeno (nombre actual y en paréntesis nombre
con el que fue reportado), la enfermedad y por último los autores
que la reportaron.
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Enfermedades en plantas en el Estado de
Michoacán
Sylvia Patricia Fernández-Pavía
1
, Gerardo Rodríguez-Alvarado
1
, Nuria Gómez-Dorantes
1
, María del
Rosario Gregorio-Cipriano
1
y Yolanda Leticia Fernández Pavía
2
1
Laboratorio de Patología Vegetal, Instituto de Investigaciones Agropecuarias y Forestales, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. Km. 9.5
Carr. Morelia-Zinapécuaro, CP 58880.
2
Nutrición, Fruticultura, IREGEP, Colegio de Postgraduados. Carr. México-Texcoco Km. 36.5 Montecillo, Edo. de México CP 56230.
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Sylvia Patricia Fernández-Pavía et al.
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1998].
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2010].
Fusarium subglutinans. Escoba de bruja. [GIIM, 1998].
Meliola mangiferae. Fumagina [GIIM, 1998].
Oidium anacardii (Oidium mangiferae). Cenicilla.
[García-Álvarez, 1981; GIIM, 1998].
Phymatotrichopsis omnivora (Phymatotrichum
omnivorum). Pudrición texana, Pudrición de raíz.
[García-Álvarez 1981, GIIM, 1998].
Phytophthora cinnamomi. Cancro del tronco. [GIIM,
1998].
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Biológicas | Vol. 14, No. 2 | Diciembre 2012
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Medicago sativa (Alfalfa).
Phytophthora medicaginis (P. megasperma). Pudrición de
raíz. [Romero, 1978; Romero-Cova, 1990].
Muhlenbergia emersleyi (Zacate).
Ustilago mexicana. Carbón. [Durán, 1987].
Muhlenbergia macroura (Zacate).
Uromyces epicampis. Roya. [León-Gallegos y Cummins,
1981].
Muhlenbergia sp. (Zacate).
Radopholus similis. Nematodo asociado. [Cibrián-Tovar et
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Colletotrichum musae (Gloeosporium musarum).
Pudrición del fruto. [García-Álvarez, 1981].
Deightoniella torulosa (Helminthosporium torulosum).
Punta de cigarro, pudrición de la punta del fruto [García-
Álvarez, 1981].
Meloidogyne incognita. Agallamiento de raíz. [Cid del
Prado-Vera et al., 2001].
Musa spp. (Plátano).
Hoplolaimus sp. Nematodos lanceta. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Musa sp. (Plátano).
Radopholus sp. Nematodo barrenador. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Radopholus similis. Nematodo asociado. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Olea europea (Olivo).
Pseudomonas savastanoi. Tuberculosis del olivo. [García-
Álvarez, 1981].
Sphaceloma sp. Roña del fruto. [García-Álvarez, 1981].
Opuntia sp. (Nopal).
Capnodium sp. Fumagina. [García-Álvarez, 1981].
Oryza sativa (Arroz).
Curvularia sp. Moho de la gluma. [García-Álvarez, 1981].
Gibberella sp. Pudrición del tallo. [García-Álvarez, 1981].
Passalora janseana (Cercospora oryzae). Mancha de la
gluma. [García-Álvarez, 1981].
Pythium sp. Pudrición de raíz. [García-Álvarez, 1981].
Oxalis sp. (Agritos).
Puccinia oxalidis. Roya. [López et al., 1981].
Pachyrhizus angulatus (Jícama).
Fusarium sp. Pudrición de raíz. [García-Álvarez, 1981].
Paspalum sp. (Pastos).
Xanthomonas sp. Tizón bacteriano. [García-Álvarez, 1981].
Paspalum urvillei (Pastos).
Ustilago holwayana. Carbón. [Durán, 1987].
Persea americana (Aguacatero).
Armillaria mellea. Pudrición de raíz. [Téliz-Ortiz y Mora-
Aguilera, 2007].
Cephaleuros virescens. (Alga) Mancha afelpada. [Téliz-Ortiz
y Mora-Aguilera, 2007].
Colletotrichum gloeosporioides. Antracnosis. [Téliz-Ortiz y
Mora-Aguilera, 2007].
Fusarium sp. Anillado del pecíolo. [Téliz-Ortiz y Mora-
Aguilera, 2007].
Gloeosporium sp. Tizón roñoso de la hoja. [García-Álvarez,
1981].
Glomerella acutata. Antracnosis. [Ávila-Quezada et al.,
2007].
Mycosphaerella perseae (Sphaerella perseae). Defoliación
del aguacatero, mancha plateada. [Romero-Cova, 1990,
Téliz-Ortiz y Mora-Aguilera, 2007].
Neonectria ditissima (Nectria galligena). Cancro del
tronco. [Téliz-Ortiz y Mora-Aguilera, 2007].
Phyllachora gratissima. Mancha de chapopote. [García y
Téliz-Ortíz, 1984; Téliz-Ortiz y Mora-Aguilera, 2007].
Phyllosticta sp. Mancha de la hoja. [García-Álvarez, 1981].
Phymatotrichopsis omnivora (Phymatotrichum
omnivorum). Pudrición de raíz. [García-Álvarez, 1981].
Phytophthora cinnamomi. Tristeza o marchitez rápida.
[García-Álvarez, 1981; Mendoza-Zamora y Pinto Cortez,
1982].
Phytophthora parasitica. Cancro. [Ceja-Torres et al., 2000].
Pseudocercospora purpurea (Cercospora purpurea).
Mancha de la hoja y fruto, Mancha púrpura o angular
de la hoja. [García-Álvarez, 1981, Téliz-Ortiz y Mora-
Aguilera, 2007].
Pseudomonas. Perforaciones de la hoja. [Téliz-Ortiz y Mora-
Aguilera, 2007].
Rhizobium radiobacter (Agrobacterium tumefaciens).
Agalla de la corona. [Téliz-Ortiz y Mora-Aguilera, 2007].
Sphaceloma perseae. Roña. [Vidales, 1996].
Viroide Sunblotch del aguacate (ASBVd). [De La Torre-
Almaraz et al., 2009].
Phaseolus multiorus (Frijol).
Uromyces appendiculatus var. appendiculatus (Uromyces
phaseoli). Roya. [García-Álvarez, 1981].
Phaseolus vulgaris (Frijol).
Colletotrichum lindemuthianum. Antracnosis. [Mendoza-
Zamora y Pinto Cortez, 1982; Rodríguez-Guerra et al.,
2003; Sánchez- García et al., 2009].
Heterodera. Nematodo enquistador. [Tovar-Soto et al.,
2006].
Phaeoisariopsis griseola (Isariopsis griseola). Mancha
angular. [Campos-Ávila y Fucikovsky-Zak, 1980;
Romero-Cova, 1988].
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Phytophthora phaseoli. Tizón de halo. [Buenrostro y
Soriano, 1987].
Pseudomonas syringae pv. phaseolicola (Pseudomonas
phaseolicola). Tizón de halo, [García-Álvarez, 1981;
Navarrete-Maya y Acosta-Gallegos, 2000].
Uromyces appendiculatus var. appendiculatus (U.
appendiculatus, Uromyces phaseoli). Roya. [López et al,
1981, Romero, 1988].
Xanthomonas campestris pv. phaseoli (Xanthomonas
phaseoli). Tizón común. [García-Álvarez, 1981].
Phaseolus sp. (Frijol).
Erysiphe polygoni. Cenicilla. [García-Álvarez, 1981].
Uromyces appendiculatus var. appendiculatus (Uromyces
phaseoli). Chahuixtle. [García-Álvarez, 1981].
Physalis ixocarpa (Tomate verde).
Fusarium oxysporum. Marchitez. [Mendoza-Zamora,
1996].
Pinus douglasiana (Pino lacio).
Arceuthobium globosum subsp. grandicaule. Muérdago
enano de tallo largo. [Hawksworth y Wiens, 1996].
Heterobasidion annosum (Fomes annosus). Pudrición de
raíz y tronco. [Sánchez-Ramírez, 1980].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo y Geils, 2002].
Pinus durangensis (Pino blanco).
Arceuthobium globosum subsp. grandicaule. Muérdago
enano de tallo largo. [Hawksworth y Wiens, 1996].
Pinus leiophylla (Pino).
Heterobasidion annosum (Fomes annosus). Pudrición de
raíz y tronco. [Sánchez-Ramírez, 1980].
Psittacanthus americanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus schiedeanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo y -Pérez, 1982].
Pinus maximinoi (Pino, ocote).
Arceuthobium globosum subsp. grandicaule. Muérdago
enano de tallo largo. [Hawksworth y Wiens, 1996].
Fusarium subglutinans. Cancro resinoso. [Guerra-Santos y
Cibrián-Tovar, 1998].
Pinus michoacana (Pino de Michoacán, pino escobetón).
Arceuthobium globosum subsp. grandicaule. Muérdago
enano de tallo largo. [Hawksworth y Wiens, 1996].
Fusarium subglutinans. Cancro resinoso. [Guerra-Santos y
Cibrián-Tovar, 1998].
Pinus montezumae (Pino Montezuma).
Alternaria y Fusarium. Ahogamiento. [Vázquez-Collazo y
Sánchez-Ramírez, 1981].
Arceuthobium globosum. Muérdago enano. [Vázquez-
Collazo, 1994].
Fusarium subglutinans. Cancro resinoso. [Guerra-Santos y
Cibrián-Tovar, 1998].
Psittacanthus americanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus schiedeanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo y Pérez- Chávez, 1982].
Pinus oocarpa (Pino amarillo).
Alternaria sp. y Fusarium sp. Ahogamiento. [Vázquez-
Collazo y Sánchez-Ramírez, 1981].
Cronartium quercuum (Cronartium conigenum). Roya.
[Morales-García, 1991].
Fusarium subglutinans. Cancro resinoso. [Guerra-Santos y
Cibrián-Tovar, 1998].
Pinus patula (Pino pátula, ocote).
Heterobasidion annosum (Fomes annosus). Pudrición de
raíz y tronco. [Sánchez-Ramírez, 1980].
Pinus pseudostrobus (Pino lacio).
Alternaria y Fusarium. Ahogamiento. [Vázquez-Collazo y
Sánchez-Ramírez, 1981].
Arceuthobium globosum. Muérdago enano. [Vázquez-
Collazo, 1994].
Cronartium sp. Roya. [Sánchez-Ramírez y Del Río-Mora,
1986].
Cronartium quercuum f. sp. fusiforme. Roya fusiforme.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Fusarium subglutinans. Cancro resinoso. [Guerra-Santos y
Cibrián-Tovar, 1998].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo y Geils, 2002].
Pinus teocote (Pino colorado).
Arceuthobium globosum subsp. grandicaule. Muérdago
enano de tallo largo. [Hawksworth y Wiens, 1996].
Psittacanthus americanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo et al., 1986].
Psittacanthus schiedeanus. Muérdago verdadero. [Vázquez-
Collazo y Pérez-Chávez, 982].
Prosopis laevigata (Mezquite).
Phellinus badius. Pudrición blanca. [Cibrián-Tovar et al.,
2007].
Prunus armeniaca (Chabacano).
Alternaria sp. Mancha de la hoja, pudrición del fruto.
[García-Álvarez, 1981].
Prunus capuli (Capulín).
Alternaria sp. Mancha de la hoja. [García-Álvarez, 1981].
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Biológicas | Vol. 14, No. 2 | Diciembre 2012
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Prunus persica (Duraznero).
Phymatotrichopsis omnivora (Phymatotrichum
omnivorum). Pudrición texana. [Romero-Cova, 1988].
Prunus sp. (Durazno criollo).
Virus mosaico del durazno (PMV). [Oldeld et al., 1995].
Prunus spp. (Durazno, chabacano, cerezo y ciruelo).
Wilsonomyces carpophilus. Tiro de munición. [Cibrián-
Tovar et al., 2007, Eds.].
Ganoderma applanatum. Pudrición del cuello de la raíz.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Ganoderma lucidum. Pudrición del cuello de la raíz.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Taphrina deformans. Verrucosis. [García-Álvarez, 1981;
Mendoza-Zamora y Pinto-Cortez, 1982; Aceves y Téliz-
Ortíz, 1984].
Prunus serotina subsp. Capulí (Capulín).
Phoradendron brachystachyum. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Phoradendron carneum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Phoradendron velutinum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Pseudotsuga macrolepis (Abeto Douglas).
Alternaria sp. Mancha foliar. [Cibrián-Tovar et al., 2007,
Eds.].
Heterobasidion annosum (Fomes annosus). Pudrición de la
raíz. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Phaeolus schweinitzii. Pudrición café del cuello de raíz.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Pseudotsuga menziesii (Pino de Oregón).
Phaeolus schweinitzii. Pudrición café del cuello de raíz.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Psidium guajava (Guayabo).
Capnodium sp. Fumagina. [García-Álvarez, 1981].
Clasterosporium sp. Mancha de las hojas y ramas. [García-
Álvarez, 1981].
Colletotrichun gloesporioides. Antracnosis. [Gutiérrez-
Alonso et al., 2002].
Sphaceloma sp. Roña del fruto. [García-Álvarez, 1981].
Psittacanthus schiedanus (Muérdago).
Phoradendron brachystachyum. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Pyrus communis (Peral).
Botryosphaeria obtusa (Physalospora obtusa). Pudrición
negra, mancha de la hoja. [García-Álvarez, 1981].
Phoradendron velutinum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007].
Phymatotrichopsis omnivora (Phymatotrichum
omnivorum). Pudrición de raíz, pudrición Texana
[García-Álvarez, 1981; Romero-Cova, 1988].
Pyrus malus (Peral).
Physalospora sp. Cáncer del tronco y ramas. [García-Álvarez,
1981].
Pyrus sp. (Peral).
Erwinia amylovora. Tizón de fuego. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Rhizobium radiobacter (Agrobacterium tumefaciens).
Tumor bacteriano. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus sp. (Encino, roble).
Alternaria sp. Mancha foliar. [Cibrián-Tovar et al., 2007,
Eds.].
Cladocolea diversifolia (Struthanthus diversifolius).
Muérdago. [Cibrián-Tovar et al., 2007].
Cladocolea grahami (Struthanthus grahami). Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Cladocolea loniceroides (Struthanthus hunnewellii, S.
loniceroides, S. mexicanus). Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Cladocolea mcvaughii. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Cladocolea microphylla (Struthanthus microphyllus).
Muérdago. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Cladocolea pedicellata. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Cladocolea pringlei. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al., 2007,
Eds.].
Inonotus fulvomelleus. Pudrición en troncos [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Oidium sp. Cenicilla. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Phellinus gilvus. Pudrición de corazón [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Phellinus sarcites. Degradador de maderas caídas. [Cibrián-
Tovar et al., 2007, Eds.].
Phoradendron quadrangulare. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Phyllactinia sp. Cenicilla. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Podosphaera sp. Cenicilla. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Pycnoporus sanguineus. Pudrición de maderas tropicales.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Stereum hirsutum (Stereum complicatum). Pudrición de la
madera por Stereum. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Stereum ostrea. Pudrición de la madera [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Struthanthus quercicola. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Trametes versicolor. Pudrición de la madera. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Verticillium albo-atrum. Marchitez. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
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Verticillium dahliae. Marchitez. [Cibrián-Tovar et al., 2007,
Eds.].
Quercus acutifolia (Encino).
Phoradendron galeottii. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus agrifolia (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus aristata (Encino).
Cladocolea mcvaughii. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus arizonica (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus candicans (Encino).
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Phoradendron velutinum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus castanea (Encino roble, capulincillo).
Phoradendron brachystachyum. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Phoradendron rhipsalinum. Muérdago, injerto. [Bello y
Gutiérrez citado por Geils et al., 2002].
Quercus crassipes (Encino).
Phoradendron brachystachyum. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus crassifolia (Encino).
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Quercus eduardii (Encino).
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Qyercus emoryi (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus germana (Encino).
Psittacanthus schiedeanus. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus glaucoides (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus gravesii (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus grisea (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus laurina (Encino blanco).
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Psittacanthus schiedanus. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Rhizobium radiobacter (Agrobacterium tumefaciens).
Tumor bacteriano. [Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus leiophylla (Encino).
Psittacanthus schiedanus. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus macrophylla (Encino).
Cladocolea mcvaughii. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus mexicana (Encino).
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus oblongifolia (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus obtusata (Encino).
Phoradendron brachystachyum. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Psittacanthus calyculatus. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Quercus resinosa (Encino colorado).
Eichleriella macrospora. Muerte regresiva. [Vázquez-
Collazo et al., 1981].
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Quercus reticulata (Encino, árbol maderable).
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Quercus rugosa (Encino).
Phoradendron falcifer. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
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Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Phoradendron reichenbachianum. Muérdago. [Cibrián-
Tovar et al., 2007].
Phoradendron velutinum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007].
Quercus sideroxyla (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus turbinella (Encino).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Quercus viminea (Encino).
Phoradendron longifolium. Muérdago. [Cibrián-Tovar et
al., 2007, Eds.].
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Randia sp. (Cruceto).
Cladocolea gracilis. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al., 2007,
Eds.].
Phoradendron quadrangulare. Muérdago. [Cibrián-Tovar
et al., 2007, Eds.].
Rhamnus sp. (Espino cerval, Aladierno).
Phoradendron velutinum. Muérdago. [Cibrián-Tovar et al.,
2007, Eds.].
Rhus integrifolia (Ballas de limonada o Limonada Zumaque).
Phoradendron serotinum subsp. tomentosum. Muérdago.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Rhus trilobata (Rus).
Pileolaria patzcuarensis. Roya. [León-Gallegos y Cummins,
1981].
Rhus sp. (Rus).
Pileolaria brevipes. Roya. [León-Gallegos y Cummins,
1981].
Rosa spp. (Rosal).
Podosphaera macularis (Sphaerotheca humuli,
Sphaerotheca macularis). Cenicilla. [García-Álvarez,
1981].
Roystonea oleracea (Palmera real).
Bursaphelenchus cocophilus. Nematodo del anillo rojo.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Roystonea regia (Palmera real).
Bursaphelenchus cocophilus. Nematodo del anillo rojo.
[Cibrián-Tovar et al., 2007, Eds.].
Rubus fruticosus.
Peronospora sparsa. Mildiu. [Rebollar-Alviter et al., 2009].
Rubus idaeus (Frambuesa roja).
Pucciniastrum americanum. Roya. (Rebollar-Alviter et al.,
2001).
Rubus spp. (Zarzamora).
Rhizobium radiobacter (Agrobacterium tumefaciens).
Agalla de la corona. [García-Álvarez, 1981].
Rubus sp.
Gerwasia rubi. Roya. [León-Gallegos y Cummins, 1981].
Rumfordia sp. (Planta arbustiva o herbácea).
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1988; Pataky et al., 2000].
Discusión
La información presentada en este trabajo proviene de 93 reportes
de enfermedades y plantas parásitas presentes en el estado de
Michoacán. Los patógenos causantes de estas enfermedades
se encontraron en 197 hospedantes distribuidos en diferentes
regiones del estado, en cultivos de importancia agrícola, en zonas
forestales y en malezas. Al comparar la información reportada
previamente para Michoacán (Fernández-Pavía et al., 2008), las
citas reportadas en la presente revisión representan un incremento
del 82% en el número de patógenos reportados, y un incremento
del 203% en el número de hospedantes. Esto es indicativo de la
necesidad de actualizar continuamente la información presentada
en estos reportes.
Como ya se ha mencionado (Fernández-Pavía et al., 2008), es
indispensable contar con una lista actualizada de las enfermedades
reportadas en cultivos agrícolas y plantas forestales en Michoacán
para facilitar a los técnicos, investigadores y agricultores, a realizar
diagnósticos correctos de enfermedades presentes en el campo y
bosques del estado.
Conc lusión
Michoacán es uno de los estados con mayor diversidad de
patógenos y plantas parásitas en la Republicana Mexicana.
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... El cultivo de zarzamora es afectado por diversas especies de hongos fitopatógenos, causando pérdidas en la producción y económicas significativas, hasta un 25% equivalente a 2,540 millones de pesos anuales. Entre las principales enfermedades que afectan al cultivo de zarzamora se han reportado el moho gris (Botrytis cinerea), la roya anaranjada (Arthuriomyces peckianus), la mancha de la hoja (Cercospora sp.), la antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides), el mildiú (Peronospora sparsa), y la pudrición de la raíz (Fusarium sp.) (Fernández-Pavía et al., 2012). Sin embargo, las condiciones edafo-climáticas cambiantes, como consecuencia de las prácticas agrícolas intensivas y el cambio climático, han inducido la aparición de diversos fitopatógenos emergentes con impactos negativos en la producción de cultivos agrícolas de interés económico, social y cultural. ...
... Blackberry production is affected by several species of fungi, causing losses in production, as well as economic losses of up to 25%, equal to 2,540 million pesos per year. Among the main diseases that impact blackberry crops are the gray mould (Botrytis cinerea), orange rust (Arthuriomyces peckianus), leaf spot (Cercospora sp.), anthracnosis (Colletotrichum gloeosporioides), mildew (Peronospora sparsa), and root rot (Fusarium sp.) (Fernández-Pavía et al., 2012). However, soil and weather conditions that are changing as a consequence of the intensive agricultural practices and climate change, have exerted an influence on the appearance of diverse emerging phytopathogens with negative impacts on the production of agricultural crops of economic, social and cultural interest. ...
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En el año 2017 se presentaron diversos brotes de enfermedades causadas por hongos fitopatógenos en cultivos de zarzamora variedad “Tupi” ( Rubus subgénero Eubatus ) de la región de Los Reyes-Peribán, Michoacán. De las plantas afectadas se realizaron varios cultivos para el aislamiento y caracterización de hongos fitopatógenos. En este trabajo, se caracterizó morfológica y molecularmente la cepa fúngica AB1, mediante la amplificación y secuenciación del gen ribosomal 18S y la región intergénica (ITS). Los análisis BLAST mostraron que el aislado fúngico AB1 tuvo una alta identidad con hongos del género Lasiodiplodia ( Lasiodiplodia theobromae y Lasiodiplodia parva ), adicionalmente se corroboró in vitro la infección de Lasiodiplodia sp. AB1 en plántulas de zarzamora. Este es el primer reporte de la presencia de Lasiodiplodia sp. en cultivos de zarzamora de la variedad ¨Tupi¨.
... Mexico is the main blackberry-producing country worldwide with a production of over 215,923 tons, where the state of Michoacán contributes 97% of this berry fruit [1]. Among the main diseases that have been reported for this crop are gray mold (Botrytis cinerea), orange rust (Arthuriomyces peckianus), leaf spot (Cercospora sp), anthracnose (Colletotrichum gloesporoides), mildew (Peronospora sparsa), and root rot (Fusarium sp) [2]. The genus Fusarium damages the root system of the crop and has caused land abandonment, affecting more than 2,000 hectares. ...
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Los Reyes, Michoacán, Mexico, is one of the main blackberry-producing places in the world, however, the disease located at the root level has caused important economic losses. Currently has been reported that the fungus Fusarium spp., is the main causal agent but actions to control it have failed. The objective of this work was to identify the possible presence of unreported pathogenic fungi in the root system of the blackberry and identify them molecularly. It was sampled in a commercial open-air orchard from Los Reyes, pieces of roots were taken from symptomatic plants with wilting and decay. The fungi were isolated in the laboratory, identified with taxonomic keys, extraction was performed, and the sequences obtained were compared with those reported in the NCBI gene bank. Among the results obtained were Kalmusia italica, Epicoccum nigrum, Microsphaeropsis arundinis, Achizophyllum commune, and, as expected, some species of Fusarium spp.
... Colletotrichum gloeosporioides y Fusarium oxysporum f. sp. mori (Fernández et al., 2012). ...
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El género Bacillusproduce compuestos volátiles, hormonas vegetales, polisacáridos y enzimas relacionadas con el metabolismo de los fenilpropanoides, lo que representa un alto potencial para la promoción del crecimiento vegetal. En este estudio se analizaron los efectos de compuestos difusibles y volátiles producidos por cuatro endófitos bacterianos de Bacillus(Bacillussp. E25, B. toyonensisCOPE52, B. thuringiensisUM96 y Bacillussp. CR71) sobre la promoción del crecimiento de plántulas de zarzamora(Rubus fruticosus L.), cultivares Tupy, Kiowa y UM-13,mediante cultivo in vitro.Los resultados demostraron que la emisión de compuestos difusibles y orgánicos volátiles por la cepa COPE52 promovieron el aumento de la longitud y peso seco de la raíz, número de raíces y la concentración de clorofila en plántulas del cultivar Tupy. La emisión de compuestos difusibles de la cepa COPE52 indujo el aumento del peso seco de raíz y aéreo, y longitud de la raíz en el cultivar Kiowa, mientras que los compuestos volátiles emitidos porla cepa E25 promovieron incrementos en la mayoría de las variables analizadas en esta misma variedad. Los compuestos difusibles y volátiles producidos por la cepa CR71 tuvieron un mayor efecto sobre el número, longitud y peso seco de raíz en las plántulasdel cultivar UM-13, mientras que la concentración de clorofila aumentó con los compuestos producidos por la cepa E-25. En conclusión, las bacterias endófitas de Bacillusspp. promovieron diferencialmente el crecimiento de plántulas de los cultivares de zarzamora, en función del tipo de cepa inoculada y del modo de acción de los compuestos producidos.
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El presente estudio fue realizado con la finalidad de evaluar el efecto bioinsecticida de hojas de Tagetes erecta sobre larvas de Zadiprion vallicola. Para ello, se extrajeron por maceración extractos de agua, acetona y etanol de las hojas de T. erecta. Se aplicaron en concentraciones de 250 mg/L, 500 mg/L, 750 y 1000 mg/L y agua destilada como control. Se calcularon las mortalidades corregidas en proporción y se realizó un análisis de variancia. Además, se calculó la LC50 para los diversos extractos obtenidos. Se presentaron diferencias de mortalidades entre las concentraciones (F = 171.4, p < 0.001), entre solventes (F = 1060, p < 0.001) y en las interacciones (F = 7.3, p < 0.001). En el grupo de control la mortalidad fue nula, debido a los extractos; las mayores mortalidades se presentaron en aplicaciones mayores a 500 mg/L. Al aumentar las concentraciones la mortalidad marcó una tendencia a estabilizarse. Los extractos de acetona y etanol, con mortalidades de 0.81 y 0.96, fueron altamente efectivos comparados con los extractos de agua con mortalidad de 0.64. Los extractos de etanol produjeron una LC50 de 63.1 mg/L y los de acetona de 64.5 mg/L, bajas concentraciones comparadas con la que produjeron los extractos de agua de 398.1 mg/L. Los efectos de estos extractos sobre la mortalidad de Z. vallicola, son similares a los registrados para el hongo entomopatogeno Metharizium anisopliae, por lo que representan una valiosa alternativa para su control, especialmente en el caso de los extractos etanólicos.
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Objective of present work was to determine berries characteristics of Cissus tiliacea Kunth and C. verticillata (L.) Nicholson and C. E. Jarvis harvested during complete 2018 and 2017 seasons in Zumpahuacán, Mexico and the relationship of those characteristics with accumulated temperature during fruit growing period. First harvest date was at 49 days after first fruit set (DAFFS); then, berries were harvested at 64, 79, 94 and 109 DAFFS. A three-factor factorial combined analysis of variance indicated differences in fruit weight, height, factors of peel color (luminosity, a, b, chroma and Hue), fleshy acidity and content of total soluble solids for Cissus species (C), years of cropping (Y), harvest day (H), C × Y, C × H, Y × H and C × Y × H. Fruit width presented differences only for factor C, whereas fruit relationship width/height (fruit shape) was not different in any factor. For every harvest date, the day average temperature of the 40 days previous to harvest was counted; in both seasons the average of accumulated temperature was 541 °C. Nevertheless, in 2017 temperature accumulation ranked from 551 to 528 °C, whereas in 2016 that rank was between 547 and 535 °C. In C. verticillata, during 2017, lower peel luminosity and values of color factor a occurred along higher accumulation of temperature, but that situation was not observed in C. tiliacea. Principal component (PC) 1 and PC2 explained 60% and 50% of variance in C. verticillata and C. tiliacea, respectively; this method confirmed influence of season and date of harvest in fruit quality.
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p>Las especies del género Colletotrichum son agentes causales de antracnosis en un amplio rango de hospedantes. De acuerdo con estudios taxonómicos, Colletotrichum se clasifica filogenéticamente en 9 clados; la identificación molecular de los complejos de especies se basa en distintas regiones genómicas conservadas. En México, se han reportado 46 especies de las cuales 28 se identificaron a nivel morfológico y 18 a nivel molecular. C. gloeosporioides y C. truncatum son las principales especies reportadas que afectan a un mayor número de hospedantes como papaya, chile, mango, limón y aguacate, entre otros. Este rango amplio de hospedantes puede deberse a la habilidad del hongo de emplear diferentes estrategias de infección: colonización intramural subcuticular o colonización intracelular. Las estrategias de control en Colletotrichum spp. incluyen control físico,químico y biológico, entre otras. El objetivo de esta revisión consiste endescribir el estado actual de las especies de Colletotrichum en México.</p
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Two anamorphic powdery mildews (Erysiphales) on Senna spp., recently found in Mexico, have been morphologically and genetically examined, as well as subjected to pathogenicity tests. Powdery mildew on Senna occidentalis proved to belong to the Podosphaera xanthii complex (P. xanthii s. lat.), and another collection on S. septemtrionalis has been identified as Erysiphe (Pseudoidium) sp.
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Resumen. Del Prado-Vera, I.C., Tovar-Soto, A. y Hernández, J.A. 2001. Distribución de Especies y Razas de Meloidogyne en México. Revista Mexicana de Fitopatología 19:32-39. Durante el ciclo agrícola 1995, se muestrearon 47 localidades de manera aleatoria ubicadas en 18 estados de México; las muestras consistieron de suelo y raíces provenientes de 18 cultivos en los que se incluyeron a básicos, hortalizas, frutales, y ornamentales. En total se obtuvieron 56 poblaciones, de las cuales el 60.7% correspondió a Meloidogyne incognita, el 21.4% para M. arenaria, el 12.5% para M. javanica y un 5.3% para M. hapla. Del total de las localidades muestreadas, en 8 se encontró la mezcla de especies en donde tres presentaron a M. incognita, M. arenaria y M. javanica; tres más con M. incognita y M. arenaria; una con M. incognita, M. arenaria y M. hapla y una con M. incognita y M. javanica. Las razas encontradas durante el estudio fueron: la raza 1 y 2 para M. incognita y la raza 2 para M. arenaria. Palabras clave adicionales: Nematodo agallador, Meloidogyne incognita, Meloidogyne arenaria, Meloidogyne javanica, Meloidogyne hapla. Abstract. During the 1995 crop cycle, 47 localities were sampled at random from 18 states of Mexico. Samples consisted of soil and roots from 18 crops, including basic crops, vegetables, fruit trees and ornamentals. A total of 56 populations were obtained from which 60.7% belonged to Meloidogyne incognita, 21.4% to M. arenaria, 12.5% to M. javanica and 5.3% to M. hapla. Out of the total localities sampled, eight presented a mixture of species: three had M. incognita, M. arenaria and M. javanica; three more had M. incognita and M. arenaria; one had M. incognita, M. arenaria and M. hapla; and another one had M. incognita and M. javanica. The races identified during the study were: race 1 and 2 for M. incognita and race 2 for M. arenaria.
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Avocado canker occurred on the main trunk of trees generally as dark areas, with white powder on its surface and cracks on the bark; the lesion usually deepens through the central cylinder. Fusarium equiseti, F. oxysporum and F. solani were isolated from this type of lesions. Pathogenicity tests with F. oxysporum and F. solani resulted in small dark spots, with white powder on inoculated avocado seedlings; F. equiseti did not damage the seedlings. Nectria galligena was observed in histological preparations from naturally diseased tissues with dark spots. A second type of canker was observed on the base of the stem, it was dark colored and sometimes with gum; in this case, the internal lesion was light brown and cortical and vascular tissues were affected. Phytophthora parasitica, P. cinnamomi and P. heveae were isolated from these lesions; P. heveae caused similar cankers on the base of the stem of inoculated seedlings; P. cinnamomi caused necrosis and constriction on the stem; both species produced wilt and killed the inoculated seedlings; P. parasitica did not produce any symptom. Avocado canker was found in the four counties sampled, its incidence varied from 1% in Tingambato, Uruapan and Nuevo Parangaricutiro groves at altituted above 1900 masl, to 90% in an Uruapan grove at 1700 masl. The highest medium incidence was registered in Ziracuaretiro (39%) and Uruapan (38%) in groves located at altitudes lower than 1600 m. Disease incidence was negatively correlated with groves altitude (R 2 = 0.82). Groves irrigated and with excessive shading favored disease development. Additional keywords: Fusarium spp., Phytophthora spp., Nectria galligena.
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SUMMARY Cempazuchil (marigold, Tagetes erecta L.) plants with symptoms of phyllody, virescence, witches' broom (shoot proliferation), apical dwarfing and yellowing were collected from fields in the States of Puebla, Mi- choacan, Guanajuato, and Estado de Mexico. They were examined for the presence of phytoplasmas by nested polymerase chain reaction (PCR) using the uni- versal primer pair R16mF2/R16mR1 followed by the primer pair R16F2n/R16R2. Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis of R16F2n/R16R2-PCR products and the sequencing of the 16S rDNA indicat- ed that the phytoplasma which induces the disease known as "filodia del cempazuchil" (marigold phyllody) belongs to the aster yellows group (16SrI), subgroup B. Our results also indicated that the variety of symptoms shown by diseased Tagetes plants from different States in Mexico were induced by the same phytoplasma.
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Vánky, K. (2004). New smut fungi (Ustilaginomycetes) from Mexico, and the genus Lundquistia. Fungal Diversity 17: 159-190. The genus Lundquistia is emended and widened. Twelve new species of smut fungi are described from Mexico: Lundquistia mexicana on Andropogon gerardii and Schizachyrium mexicanum, Entyloma aldamae on Aldama dentata, E. siegesbeckiae on Siegesbeckia orientalis, Jamesdicksonia festucae on Festuca tolucensis, Macalpinomyces tuberculatus on Bouteloua curtipendula, Sporisorium dacryoideum on Aristida adscensionis, S. ustilaginiforme on Muhlenbergia pulcherrima, Tilletia brefeldii on Muhlenbergia filiculmis, T. gigacellularis on Bouteloua filiformis, T. microtuberculata on Muhlenbergia pulcherrima, Ustilago circumdata on Muhlenbergia montana, and U. panici-virgati on Panicum virgatum. New combinations proposed: Lundquistia dieteliana, L. duranii and L. panici-leucophaei, with its three new synonyms, Ustilago bonariensis, Sorosporium lindmanii and L. fascicularis.
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By late August 1997, sorghum ergot (Claviceps africana Frederickson, Mantle & De Milliano) had not been detected in the Bajio area in central Mexico, the second-largest sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) producing area in the country, despite earlier 1997 reports of the disease in the adjacent states of San Luis Potosi, Michoacan, and Jalisco. A mid-September survey was conducted in el Bajio, primarily in the state of Guanajuato, and adjacent areas in the states of Michoacan and Jalisco. Infected sorghum heads showing ergot symptoms of honeydew and white secondary sporulation were observed in commercial grain and hybrid seed fields in all three states. Environmental conditions, late summer rains and early low temperatures promoting abundant dew, as well as extended periods of sorghum blooming, contributed to a low and delayed incidence of ergot in Guanajuato. In Michoacan and Jalisco the higher relative humidity and rainfall (around 750 ml) probably contributed to the observed epidemic of ergot. Johnsongrass (Sorghum halepense (L.) Pers.) florets also showed ergot symptoms. Macroconidia in honeydew were hyaline, oblong to oval, slightly constricted at the center, with an average size of 15 × 7 μm, agreeing with the given description of Sphacelia sorghi McRae (2), the anamorph stage of C. africana. No sclerotia were found on any host. Ergot control in this region of Mexico is being attempted by chemical means and burning of heads, even in commercial fields with minimal incidence of ergot. This report of ergot spread complements an earlier note describing the initial detection of the disease in Tamaulipas, the largest sorghum-producing state in Mexico (1). References: (1) J. Aguirre R. et al. Plant Dis. 81:831, 1997. (2) D. E. Frederickson et al. Mycol. Res. 95:1101, 1991.
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Several different Rp genes in corn condition chlorotic fleck resistant reactions to Puccinia sorghi. Rp-resistance has been used successfully for the past 15 years to control common rust on sweet corn in North America. Most, but not all, Rp-resistant sweet corn hybrids carry the Rp1-D gene. In August and September 1999, isolates of P. sorghi were collected from Rp-resistant sweet corn grown in Illinois, Wisconsin, Minnesota, Michigan, and New York. This was the first widespread occurrence in North America of P. sorghi virulent on corn with Rp1-D (2). The origin of this population of P. sorghi with a virulence phenotype new to North America is not known. Since many believe Mexico is the source of common rust inocula for the midwestern United States, it is important to discover if this virulence occurs in Mexico. Forty-one Rp-resistant and nine susceptible sweet corn hybrids were planted 8 December 1999 in a nursery near Los Mochis, Mexico, in the state of Sinalao. Rp-resistant hybrids had been effective ag...
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Angular, blackish brown lesions, 10 or 20 cm in length, bordered with purple-black angular area 1-2 mm wide and showing a grayish center, were frequently observed on leaf sheaths of bread wheat, durum wheat, and triticale at the booting stage in the central highlands of Mexico, 2,249-2,640 m above sea level. Fluorescent, strictly aerobic bacteria identified as Pseudomonas fuscovaginae (based on their positive reaction for Kovac's oxidase and arginine dihydrolase but negative for esculin hydrolysis and nitrate reduction) were isolated from these lesions (...)