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生理学报 Acta Physiologica Sinica, June 25, 2010, 62 (3): 219-224
http://www.actaps.com.cn 219
研究论文
中性粒细胞 mGluRI 的激活促进其与内皮细胞相互黏附
刘雪云
1,2
,刘 永
1
,李金凤
1
,岳少杰
3
,申 丽
1
,李 晨
1
,汉建忠
1
,许建平
1
,冯丹丹
1
,刘惠君
1
,
罗自强
1,*
1
中南大学湘雅医学院生理学系,长沙 410078;
2
福建中医药大学中西医结合系生理教研室,福州 350108;
3
中南大学
湘雅医院儿科,长沙 410078
摘 要:本文旨在探讨 I组代谢型谷氨酸受体(group I metabotropic glutamate receptor, mGluRI)在中性粒细胞上的表达,以及
该受体的激活对中性粒细胞与内皮细胞相互黏附的影响。取健康人新鲜静脉血,Ficoll-Hypaque 密度梯度离心法分离中性
粒细胞,免疫细胞化学法和 real-time PCR 法检测中性粒细胞 mGluRI (包括 mGluR1 和mGluR5)的表达,分别应用不同浓度
的mGluRI特异性激动剂 S-3, 5- 二羟基苯甘氨酸(S-3,5-dihydroxy-phenylglycine, S-DHPG)处理中性粒细胞不同时间,通过比
色法检测中性粒细胞和人正常脐静脉内皮细胞(human normal umbilical vein endothelial cells, HUVE-12)黏附率,采用流式细胞
术测定中性粒细胞 黏附分子 CD11a表达的变化。结果 证实中性粒细胞表达 mGluRI (mGluR1/5);S-DHPG在1×10
-8
~1×10
-6
mol/L
浓度范围内呈剂量依赖性地提高中性粒细胞与内皮细胞之间的黏附率(P<0.05 或P<0.01);1×10
-6
mol/L S-DHPG单独作用于
中性粒细胞 0.5 h,即可促进中性粒细胞黏附于内皮细胞(P<0.01) ,但没有时间依赖性;1×10
-6
mol/L S-DHP G 单独作用于
中性粒细胞可促进 CD11a 表达(P<0.01);mGluRI拮抗剂(RS)-
α-
甲基 -4- 羧基苯甘氨酸[(RS)-
α
-methyl-4-carboxyphenylglycine,
(±)-MCPG] (0.5 mmol/L)可以显著阻断激动剂 S-DHPG (1×10
-6
mol/L, 1 h)的促黏附效应(P<0.01)。上述结果证实了中性粒细胞
膜上 mGluRI的激活可增强中 性粒细胞表面黏附分子 CD11a的表达,促进中性粒细胞与内皮细胞的黏附。
关键词:代谢型谷氨酸受体 1;代谢型谷氨酸受体5;中性粒细胞;血管内皮细胞;细胞黏附分子;CD11a
中图分类号:R331.1+42
Activation of mGluRI in neutrophils promotes the adherence of neutrophils to
endothelial cells
LIU Xue-Yun
1,2
, LIU Yong
1
, LI Jin-Feng
1
, YUE Shao-Jie
3
, SHEN Li
1
, LI Chen
1
, HAN Jian-Zhong
1
, XU Jian-Ping
1
,
FENG Dan-Dan
1
, LIU Hui-Jun
1
, LUO Zi-Qiang
1,*
1
Department of Physiology, Xiangya School of Medicine, Central South University, Changsha 410078, China;
2
Fujian University of
Traditional Chinese Medicine, Fuzhou 350108, China;
3
Department of Pediatrics, Xiangya Hospital, Central South University,
Changsha 410078, China
Abstract: L-glutamate (Glu) is an excitatory neurotransmitter in the mammalian central nervous system. Relatively much attention has
been paid to functional expression of Glu signaling molecules in peripheral tissues very recently. The present study tested the
hypothesis that the activation of group I metabotropic glutamate receptor (mGluRI) in neutrophils stimulated neutrophils adherence
to endothelial cells by increasing the surface expression of certain adhesion molecules. Peripheral blood was obtained by venipuncture
from healthy donors, and the neutrophils were isolated by Ficoll-Hypaque gradient centrifugation. Neutrophils floating into DMEM/
F12 culture medium containing 10% fetal bovine serum were then used immediately. Immunocytochemistry and real-time quantitative
RT-PCR were used to detect the expression of mGluRI (mGluR1 and mGluR5) in neutrophils. The adherence of neutrophils to cultured
human normal umbilical vein endothelial cells (HUVE-12) was measured by the colorimetric method. Cell surface expression of
adhesion molecule CD11a in the neutrophils was determined by flow cytometry. Immunocytochemistry and real-time quantitative RT-
PCR showed that mGluR1 and mGluR5 were constitutively expressed in neutrophils. Application of mGluRI agonist S-3,5-
Received 2010-01-18 Accepted 2010-03-15
The work was supported by the National Natural Science Foundation of China (No. 30370531, 30471835).
*
Corresponding author. Tel: +86-731-82355051; Fax: +86-731-82355056; E-mail: luozq1962@163.com
生理学报 Acta Physiologica Sinica, June 25, 2010, 62(3): 219-224
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dihydroxyphenylglycine (S-DHPG) (1×10
-8
-1×10
-6
mol/L) showed a dose-dependent stimulatory effect on the adherence of neutro-
phils to HUVE-12 (P<0.05 or P<0.01), with a maximum effect at 1×10
-6
mol/L (P<0.01). Incubations as short as 30 min were sufficient
to induce increased adherence after the beginning of S-DHPG treatment. Following time extension (0.5-5 h), S-DHPG (1×10
-6
mol/L)
increased the rate of neutrophils adhesion to HUVE-12 with a maximum effect at 0.5 h (P<0.01). However, a time-dependent effect of
S-DHPG on the rate of neutrophils adhesion to HUVE-12 was not observed during the experimental period. 1×10
-6
mol/L of S-DHPG
also induced an increased surface expression of adhesion molecule CD11a (P<0.01) when neutrophils were preincubated with 1×10
-6
mol/L of S-DHPG for 1 h. Furthermore, the specific mGluRI antagonist (RS)-α-methyl-4-carboxyphenylglycine ((±)-MCPG, 0.5
mmol/L) significantly abolished the stimulatory effect of S-DHPG (1×10
-6
mol/L) on the adherence of neutrophils to HUVE-12 (P<0.01).
These results suggest that the activation of mGluRI in neutrophils results in increased adhesion molecule CD11a expression and
thereby promotes the adherence of neutrophils to endothelial cells.
Key words: metabotropic glutamate receptor 1; metabotropic glutamate receptor 5; neutrophils; vascular endothelial cells; cell adhesion
molecules; antigens, CD11a
谷氨酸(glutamate, Glu)是脊椎动物中枢神经系统
中一类重要的兴奋性神经递质,通过激活谷氨酸受
体(glutamate receptors, GluRs)发挥作用。Glu过度
激活其受体所引起的兴奋性神经毒性在神经损伤的
发生中具有重要作用
[1-3]
。GluRs可分为亲离子型谷
氨酸受体(inotropic GluRs, iGluRs)和亲代谢型谷氨酸
受体(metabotropic GluRs, mGluRs)两类。I组代谢
型谷氨酸受体(group I metabotropic glutamate receptor,
mGluRI)是mGluRs 的重要亚型。近年来一些研究者
注意到在中枢神经系统外的外周非神经组织也广泛
存在 GluRs的表达
[4-7]
,但它们的生理及病理意义远
未阐明。
急性肺损伤(acute lung injury, ALI)和急性呼吸窘
迫综合征(acute respiratory distress syndrome, ARDS)
是常见的肺部严重疾病,发病机制尚未完全阐明。
肺内中性粒细胞的滞留、激活以及与血管内皮细胞
的黏附在 ALI和ARDS 的发生发展中起关键性的作
用
[8]
。ALI 和ARDS 是一种失控的炎症反应,以肺
毛细血管内皮细胞及肺泡上皮细胞广泛损伤为病理
特点。中性粒细胞与内皮细胞的黏附是炎症反应的
最初现象。本研究室的前期研究显示,腹腔注射
Glu可导致 ALI,且肺内有大量中性粒细胞的渗出
[9]
,
进一步显示iGluRs中的N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)
受体的激活在此过程中起着重要作用
[10]
。在中性粒
细胞浸润过程中,中性粒细胞与血管内皮细胞之间
的黏附是中性粒细胞浸润中非常重要的第一步,但
mGluRs 在此过程中有何影响未见报道。本实验通
过观察 mGluRI 在中性粒细胞的表达,以及该受体
的激活对中性粒细胞与内皮细胞黏附的影响,对其
可能的机制进行探讨,为深入研究肺脏等外周组织
中GluRs的生理及病理意义,拓展肺部疾病机制及
防治的研究提供新的思路。
1 材料和方法
1.1 材料 人正常脐静脉内皮细胞株(HUVE-12,
ATCC细胞库, CRL-2480
TM
)由中南大学湘雅医学院细
胞室提供,人新鲜全血来自健康志愿者。DMEM/
F12 培养基(GIBCO, USA);人中性粒细胞和淋巴细
胞分离液(灏洋生物制品有限公司,天津);4- 硝基
酚-N-乙酰 -β-D-氨基葡萄糖苷(4-nitrophenol-N-
acetyl-β-D-glucose-aminide, PNP-NAG, Sigma,
USA);mGluRI 特异性激动剂 S-3,5- 二羟基苯甘氨
酸(S-3,5-dihydroxy-phenylglycine, S-DHPG, Sigma,
USA);mGluRI 的特异性拮抗剂(RS)-α-甲基 -4- 羧基
苯甘氨酸[(RS)-α-methyl-4-carboxyphenylglycine, (±)-
MCPG, Sigma, USA];DEPC (Sigma, USA);即用
型SP 免疫组化试剂盒、DAB染色试剂盒(中杉金桥
生物技术有限公司,北京);胎牛血清(fetal bovine
serum,FBS,四季青生物工程材料有限公司,杭
州);兔抗人 mGluR1 抗体和兔抗人 mGluR5 抗体
(Abcam, England);PE 标记小鼠抗人 CD11a 单克隆
抗体(BioLegend, USA);引物探针,RT 试剂,荧光
定量 PCR 试剂(闪晶分子生物科技有限公司,上海)。
1.2 Ficoll-Hypaque 密度梯度离心法分离人中性粒
细胞与实验分组 参考文献方法
[11]
取新鲜抗凝血
与PBS 液体 1:1 混合后,加于等体积的人中性粒细
胞分离液界面上,2 500 r/min 水平离心 20 min后,
取第 2、3层,用 PBS 洗涤,FBS 重悬沉淀加于等
体积人淋巴细胞分离液界面上,2 500 r/min水平离
心20 min后,取第 3层,用 PBS 洗涤后台盼蓝染
色计数活细胞>99%,瑞吉染色计数纯度达到 90%
以上。细胞沉淀悬浮于含 10% FBS的DMEM/F12
221
刘雪云等:中性粒细胞 mGluRI的激活促进其与内皮细胞相互黏附
培养基中,新鲜应用。
新鲜分离的中性粒细胞分为对照组和 mGluRI特
异性激动剂 S-DHPG 组。为观察 S-DHPG 预处理中
性粒细胞对黏附变化率影响的量效和时效关系,实
验组加入终浓度为 1×10
-8
、1×10
-7
、1×10
-6
mol/L 的
S-DHPG 分别孵育 1 h,测定黏附率;另加入 1×10
-6
mol/L S-DHPG分别孵育 0.5~5 h,测定黏附率。部
分实验分为对照组、(±)-MCPG (0.5 mmol/L)组、S-
DHPG (1×10
-6
mol/L)和(±)-MCPG (0.5 mmol/L) + S-
DHPG (1×10
-6
mol/L)组;作用 1 h,测定黏附率。
对照组不加药,只加等体积量培养基。
1.3 HUVE-12细胞的培养
[12]
及与中性粒细胞黏附
率的测定
[13]
HUVE-12的培养采用含10% FBS的
DMEM/F12 培养液。将内皮细胞 1×10
8
个/L 接种于
96 孔板中,每孔 100 μL,次日换无血清培养基,
第三天实验前再换新鲜无血清培养基。分离中性粒
细胞稀释为 1×10
9
个/L,将预处理的中性粒细胞以
每孔 100 μL加入内皮细胞培养孔中继续培养 2 h,
PBS 洗涤 3次,去除未黏附的中性粒细胞,每孔加
入7.5 mmol/L PNP-NAG (溶于 0.1 mol/L柠檬酸缓冲
液,pH 5.0) 60 μL,置 37 ºC、5% CO
2
培养箱中。2 h
后每孔加入 90 μL甘氨酸缓冲液(甘氨酸 50 mmol/L、
EDTA 5 mmol/L,pH 10.4)终止反应,酶标仪 405
nm测吸光度(A)值。计算黏附率,黏附率 =(黏附细
胞A值−HUVE-12细胞 A值)/加入总细胞A值×100%。
采用黏附变化率作为测定指标,黏附变化率 =加药
组黏附率 /对照组黏附率 ×100%。
1.4 免疫细胞化学检测中性粒细胞的mGluRI (mGluR1
和mGluR5)蛋白表达 将提取的中性粒细胞涂
片,冰浴纯甲醇固定。参考 SP 免疫组化试剂盒说
明书,3% H
2
O
2
消除内源性过氧化物酶活性,相继
滴加 1:10 稀释兔抗人 mGluR1 (或mGluR5)一抗及山
羊抗兔二抗 37 ºC 孵育,DAB 法显色后镜下观察。
1.5 Real-time PCR测定中性粒细胞 mGluR1 及mGluR5
的mRNA 表达 按2×10
6
个中性粒细胞中加 1 mL
Trizol 提取总 RNA,由上海闪晶分子生物科技有限
公司完成中性粒细胞 mGluR1 及mGluR5 表达水平的
荧光定量 PCR 测定。基因引物序列如下:mGluR1
上游:5’-GTCGGGCTCCTTTTGTTTTT-3’,下
游:5’-GAAGAGGGCTCCAATGATGAC-3’,
mGluR1 probe:FAM+TTCCCAGCGATCTTTTT-
GGAGGTG+TAMRA;mGluR5 上游:5’-AATCT-
CCCGATGTCAAGTGGT-3’,下游:5’-TGTTGTA-
TTTGCTGTTCTCCTGTG-3’,mGluR5 probe:
FAM+CCAGAAACAAACCACCGAAACCCTT+
TAMRA ;GAPDH 上游:5’-CCACTCCTCCACC-
TTTGAC-3’,GAPDH 下游:5’-ACCCTGTTGC-
TGTAGCCA-3’,GAPDH-PROBE:FAM+TTG-
CCCTCAACGACCACTTTGTC+TAMRA。RT 反应
体系(20 μL):2×First-Strand Buffer 10 μL,随机引
物(100 pmol/μL) 1 μL,RT-mix 1 μL,RNA 8
μL;条件:25 ºC 10 min,40 ºC 50 min,90 ºC
5 min。荧光定量 PCR 反应体系(50 μL):2×Hotstart
Fluo-PCR mix 25 μL,Primers (25 pmol/μL) 0.8
μL×2,Probe (25 pmol/μL) 0.3 μL, cDNA 1 μL,
DEPC 水22.1 μL;扩增条件:94 ºC 4 min,94 ºC
20 s,60 ºC 30 s,循环 40 次。
1.6 流式细胞术测定中性粒细胞表面黏附分子CD11a
(LFA-1)的表达 实验分为空白对照组和S-DHPG
(1×10
-6
mol/L)组。参照文献方法
[14]
及一抗说明书,
取新鲜全血 120 μL分别加各处理因素孵育 1 h。为
了避免体外激活,直接在全血中加 CD11a (PE 标
记)单克隆抗体避光孵育 30 min,然后加 1 mL等
渗红细胞裂解液,离心后用含 1% 牛血清白蛋白的
PBS 洗涤后重悬细胞,流式细胞仪根据前向散射和
侧向散射光线特征向中性粒细胞开门,测阳性细胞
百分率及细胞的平均荧光强度(median fluorescence
intensity, MFI)。
1.7 统计学分析 所有数据用 SPSS13.0 统计软
件进行统计,测定结果以 mean±SD 表示。两组间
比较用成组 t检验;多组比较采用单因素方差分析
进行显著性检验,方差齐同,两两比较采用 LSD 检
验;方差不齐,两两比较则采用 Dunnett’s T3检
验。P<0.05 为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 中性粒细胞 mGluRI (mGluR1 和mGluR5)的
表达
免疫细胞化学检测显示中性粒细胞均可见
mGluR1及mGluR5的蛋白表达(图1)。Real-time PCR
也证实,中性粒细胞存在 mGluR1 及mGluR5 的
mRNA 表达(表1)。
2.2 S-DHPG 对中性粒细胞与内皮细胞相互黏附
的影响
2.2.1 不同剂量 S-DHPG 对中性粒细胞与内皮细
胞相互黏附的影响
生理学报 Acta Physiologica Sinica, June 25, 2010, 62(3): 219-224
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为探讨mGluRI的激活对中性粒细胞与内皮细胞
相互黏附的影响,实验预先给予中性粒细胞不同浓
度mGluRI 的激动剂S-DHPG (1×10
-8
~1×10
-6
mol/L)孵
育1 h,测定与 HUVE-12细胞的黏附率的变化。发
现当 S-DHPG单独作用于中性粒细胞时,在 1×10
-8
~
1×10
-6
mol/L 浓度范围内,随着 S-DHPG浓度增高,中
性粒细胞黏附于内皮细胞的黏附率增高(P<0.05 或P<
0.01),其中以 1×10
-6
mol/L 的促黏附效果最强(图2)。
2.2.2 S-DHPG 不同作用时间对中性粒细胞与内皮
细胞相互黏附的影响
给予中性粒细胞 1×10
-6
mol/L S-DHPG 后孵育
0.5~5 h,发现当 S-DHPG单独作用于中性粒细胞仅
0.5 h,即可促进中性粒细胞黏附于内皮细胞(P<
0.01),随着作用时间的延长,中性粒细胞黏附于
内皮细胞的比率并不随之增加(图3)。
2.3 mGluRI受体阻断剂对中性粒细胞与内皮细
胞相互黏附的影响
为进一步确认mGluRI受体激活对中性粒细胞与
内皮细胞相互黏附的影响,本研究观察了 mGluRI
的特异性拮抗剂(±)-MCPG对激动剂S-DHPG促黏附
作用的影响,以排除 S-DHPG可能的其它非受体激
动机制。结果显示,单纯(±)-MCPG (0.5 mmol/L)
对黏附率无明显影响,但可有效抑制激动剂 S-DHPG
促黏附作用(P<0.01) (图4)。
2.4 mGluRI 的激活对中性粒细胞表面黏附分子
CD11a (LFA-1)表达的影响
流式细胞术检测显示,mGluRI 激动剂 S-DHPG
(1×10
-6
mol/L)预处理中性粒细胞 1 h,CD11a (LFA-1)
的阳性率和荧光强度与对照组比较均显著增加
图 1. 中性粒细胞 mGluR1 与mGluR5 的蛋白表达
Fig. 1. The protein expression of mGluR1 and mGluR5 on neutrophils stained by SP method. A: The expression of GluR1 on neutrophils.
B: The expression of GluR5 on neutrophils. Scale bar, 10 μm.
表1. 中性粒细胞 mGlu R1 及mGluR5 mRNA 的表达(real-time
PCR)
Table 1. mGluR1 and mGluR5 mRNA expression on neutrophils
detected by real-time PCR
Ct Copy number Gene expression ratio (%)
GAPDH 22.24 3.86×10
6
GluR1 27.44 7.16×10
4
GluR5 24.69 5.88×10
5
GluR1/GAPDH 1.855
GluR5/GAPDH 15.233
图 2. 不同浓度 S-DHPG (1×10
-8
~1×10
-6
mol/L)对中性粒细胞
与内皮细胞相互黏附的影响
Fig. 2. Effects of different concentrations of S-DHPG (1×10
-8
-
1×10
-6
mol/L) on the adhesion of neutrophils to HUVE-12. Neu-
trophils were pretreated with S-DHPG (1×10
-8
-1×10
-6
mol/L) for
1 h. mean±SD, n=5.
*
P<0.05,
**
P<0.01 compared with control;
#
P<
0.05,
##
P<0.01 compared with 1×10
-8
mol/L group.
223
刘雪云等:中性粒细胞 mGluRI的激活促进其与内皮细胞相互黏附
(P<0.01)。说明 mGluRI 的激活可以明显提高中性
粒细胞表面 CD11a 的表达(表2)。
3 讨论
Glu的mGluRs 属于 G蛋白耦联受体,通过调
节细胞内第二信使的产生而影响细胞的功能活动。
mGluRs 家族根据结构同源性、药理学特性和传导
通路可分为三组 8个亚型,I组mGluRs 包括mGluR1
和mGluR5;II 组包括 mGluR2 和mGluR3;III组
包括 mGluR4、mGluR6、mGluR7 和mGluR8
[15,16]
。
I组mGluRs 过度激活在神经损伤的发生中有着重要
地位
[17]
。在外周,如在心脏、血液中的淋巴细胞、
人脑及皮肤微血管内皮上、胰腺和消化道等组织器
官中也发现有 mGluRI 表达
[5-7,18-20]
,提示 Glu可通过
mGluRI 对这些器官发挥某些调节作用。在脑微血
管内皮上的 mGluRI 被Glu 激活后,引起血管通透
性的升高,提示 mGluRI 的激活可能参与疾病过程
中微血管通透性增高的发生过程
[7]
。mGluRI 在中性
粒细胞上是否存在未见报道,本研究通过采用免疫
细胞化学和 real-time PCR的方法在蛋白和 mRNA 水
平证实,中性粒细胞存在 mGluRI 的mGluR1 和
mGluR5 两个亚型的表达。
为揭示 mGluRI 的激活对中性粒细胞功能的调
节,本实验采用 mGluRI 选择性激动剂 S-DHPG和
选择性拮抗剂(±)-MCPG 探讨中性粒细胞上 mGluRI
的激活对中性粒细胞与 HUVE-12相互黏附的影响。
结果显示,S-DHPG在1×10
-8
~1×10
-6
mol/L 范围内呈
浓度依赖方式促进中性粒细胞与内皮细胞的黏附,
该效应可被 mGluRI 的选择性拮抗剂(±)-MCPG 所阻
断。提示中性粒细胞上的 mGluRI 激活可促进中性
粒细胞与内皮细胞的相互黏附。
中性粒细胞必须首先和微血管内皮细胞黏附才
能跨血管迁移并在炎症部位聚集,因此在二者的黏
附中,产生的黏附分子及作用是极为关键的一
步。在中性粒细胞与内皮细胞黏附的早期阶段中,
选择素家族与整合素家族黏附分子发挥重要作用。
当炎症介质使内皮细胞和中性粒细胞被进一步激活
时,内皮细胞表面的细胞间黏附分子 l (intercellular
adhesion molecule 1, ICAM-1)、中性粒细胞表面的
整合素 α
L
β
2
(淋巴细胞功能相关抗原 -1,lymphocyte-
function-associated antigen-1, LFA-1, 又称 CD11a)的
表达增强或活化
[21]
。中性粒细胞表面的 LFA-1 可与
血管内皮细胞上的 ICAM-1 结合,使中性粒细胞停
图 3. S-DHPG (1×10
-6
mol/L)不同作用时间对中性粒细胞与内
皮细胞相互黏附的影响
Fig. 3. Effects of S-DHPG (1×10
-6
mol/L) treatment for different
time on the adhesion of neutrophils to HUVE-12. mean±SD, n=5.
**
P<0.01 vs Control;
#
P<0.05,
##
P<0.01 vs 0.5 h group;
+
P<0.05
vs 3 h group.
图 4. (±)-MCPG (0.5 mmol/L)对S-DHPG 促中性粒细胞与
HUVE-12 细胞黏附率的影响
Fig. 4. Effects of (±)-MCPG (0.5 mmol/L) on adhesion rate of
neutrophils and HUVE-12 promoted by S-DHPG. (±)-MCPG
group: (±)-MCPG (0.5 mmol/L) pretreatment for 1 h; S-DHPG
group: S-DHPG (1×10
-6
mol/L) pretreatment for 1 h; (±)-MCPG +
S-DHPG group: pretreatment of both (±)-MCPG (0.5 mmol/L)
and S-DHPG (1×10
-6
mol/L) for 1 h. mean±SD, n=5.
**
P<0.01 vs
Control;
##
P<0.01 vs (±)-MCPG;
++
P<0.01 vs S-DHPG.
表2. mGluRI的激活对中性粒细胞黏附分子 CD11a (LFA-1)表
达的影响
Table 2 . Effects of the mGluRI activation on the expression of CD11a
(LFA-1) in neutrophils detected by flow cytometry
Group Positive rate (%) MFI
Control 40.15±3.03 27.20±2.86
S-DHPG 56.45±4.95
**
35.58±2.13
**
MFI: median fluorescence intensity. mean±SD, n=3.
**
P<0.01 vs
control group.
生理学报 Acta Physiologica Sinica, June 25, 2010, 62(3): 219-224
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止滚动而黏附在内皮细胞上,进而通过白细胞的变
形,伸出伪足并插入内皮细胞的间隙,然后以阿米
巴运动的形式到达周围炎症组织
[22]
。本实验采用流
式细胞术测定中性粒细胞表面的 CD11a 表达变化。
当用 1×10
-6
mol/L S-DHPG处理全血 1 h后CD11a 阳
性细胞率明显升高,MFI增加,说明 mGluRI 的激
活可增强中性粒细胞表面的 CD11a表达,这可能是
mGluRI的激活促进中性粒细胞与内皮细胞相互黏附
的分子机制。这一结果提示 Glu可通过 mGluRI 的
激活参与外周炎症过程中性粒细胞与内皮细胞相互
黏附的调控,进一步扩大了 Glu 外周非神经组织损
伤机制的认识,也为临床 ALI、ARDS 等肺部疾病
防治的研究提供了新的思路。
参 考 文 献
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